Взаимодействие человека и бычьего цепня называется

Я искала ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ ЧЕЛОВЕКА И БЫЧЬЕГО ЦЕПНЯ НАЗЫВАЕТСЯ. НАШЛА! Бычьим цепнем называется ленточный червь паразит, который способен долгие годы паразитировать в человеческом организме. Заражение происходит, когда человек съедает плохо прожаренное мясо
Взаимодействие человека и бычьего цепня называется симбиозом хищничеством паразитизмом протокооперацией. Ответ оставил Гость. Правильный ответ:
паразитизм.
3. Взаимодействие человека и бычьего цепня называется Установите соответствие между мерой профилактики заражения человека и паразитом, его вызывающим
Бычий цепень (лат. Taenia saginata, невооружённый цепень, старое название – Tаeniarhynchus saginatus) – гельминт, возбудитель заболевания Крючья, как у свиного цепня, отсутствуют, поэтому бычий цепень называется невооружённым.
1.3 Воздействие цепней, бычьего и свиного, на организм человека. Бычий цепень:
все о черве, который живет у нас внутри. Заболевания, которые вызываются у человека глистами называются гельминтозы.
Взаимодействие человека и бычьего цепня называется симбиозом хищничеством паразитизмом протокооперацией. Реклама.
Латинское название. Сколекс снабжён 4 присосками без крючьев (поэтому и невооружённый).[1] Срок жизни бычьего цепня в кишечнике человека, если не предпринимать никаких мер по дегельминтизации, составляет 18-20 лет. Взаимодействие человека и бычьего цепня называется- ПРОБЛЕМЫ БОЛЬШЕ НЕТ!

Питается гельминт веществами, которые попадают в пищеварительную систему с продуктами, поэтому взаимодействие человека и бычьего цепня называется паразитизмом.
Достаточно опасный ленточный паразит. Заражению подвержены, как люди, так и животные. Разница состоит только в том, что бычий цепень у человека находится в стадии взрослой особи
В этом случае вполне возможно заражение свиным и бычьим цепнями. Цепнями называют паразитирующих у человека и некоторых видов животных в кишечнике (преимущественно) червей лентовидной формы.
Начальная стадия называется онкосфера. Имеет развитие в яйце. Существование бычьего цепня в форме онкосферы продолжается до тех пор, пока Но если рядом находятся несколько организмов, то взаимодействие происходит у разных особей.
Какого паразита называют бычьим цепнем?

Жизненный цикл паразита и варианты инвазии человека. Сколекс бычьего цепня не имеет крючков, поэтому гельминт называется «невооруженным».
Взаимодействие человека и бычьего цепня называется. Животные – промежуточные хозяева этого червя. Основным хозяином бычьего цепня является — человек.
Питается гельминт веществами, которые попадают в пищеварительную систему с продуктами, поэтому взаимодействие человека и бычьего цепня называется паразитизмом.
Окончательным хозяином бычьего цепня является человек. Данный паразит обитает в его тонком кишечнике. Заболевание называется тениаринхоз.
Заражение человека бычьим цепнем может произойти при. Взаимодействие человека и бычьего цепня называется. 1) симбиозом. Взаимодействие человека и бычьего цепня называется— 100 ПРОЦЕНТОВ!

2) хищничеством.
Бычий цепень питается веществами живого организма, принося ему вред, поэтому он является паразитом. Каковы особенности размножения и развития бычьего цепня?

Своевременное выявление возбудителей свиного цепня и бычьего цепня в организме человека или домашних животных необходимо для того
Кишечный тракт блох или их испражнений (в связи с особенностями цикла развития паразита). Бычий цепень:
симптомы, диагностика и лечение. Бычий цепень вызывает у человека заболевание под названием тениаринхоз.
Окончательный хозяин бычьего цепня – это человек, который употребил сырое или полусырое мясо или немытые овощи и травы.
http://www.greenmama.ru/nid/3472358/
http://www.greenmama.ru/nid/3472369/
http://www.greenmama.ru/nid/3586649/
http://www.greenmama.ru/nid/3567988/

анализы, как выглядит, лекарства, разновидности болезни

Знакомьтесь, бычий цепень

О масштабах причиненного вреда этим паразитом можно задуматься, если знать, что его размеры могут достигать 12 метров, в то время как кишечник человека — всего 6 метров. Бычий цепень принадлежит к классу ленточных червей, в его строении можно выделить следующие отделы:

• головка с присосками, с их помощью паразит надежно цепляется в кишечнике;
• шейка;
• тело червя, состоящее из множества члеников.

Пути заражения бычьим цепнем могут быть разными, чтобы в них разобраться, необходимо рассмотреть его жизненный цикл.

Жизненный цикл червя

Многочисленные членики бычьего цепня постепенно созревают и отделяются от туловища. В них находится огромное количество яиц. Покидая организм человека через анальное отверстие или во время посещения туалета, они попадают в окружающую среду, где могут спокойно продолжать свое существование до нескольких недель.

Бычий цепень развивается со сменой хозяев. Чтобы цикл развития продолжился дальше, яйца должны попасть в промежуточного хозяина, которым является крупный рогатый скот, например корова. Происходит это обычно вместе с травой, которую поедают животные.

В организме промежуточного хозяина из яиц выходят личинки, они по кровеносным сосудам проникают в мышечную ткань и там превращаются в пузырьки-финны – это следующая стадия развития. Теперь остается ждать, когда человек съест зараженное мясо, и цикл развития начнется сначала.

Обработка мяса

Если на 40 кв. см обнаруживаются более 3 цистицерков, то тушу отправляют на утилизацию. При выявлении не более 3 финн на обозначенной площади мясо и субпродукты подвергают обеззараживанию различными способами:

• Перетапливанием.
• Засолкой.
• Глубокой заморозкой.

Жир перетапливают, выдерживая +100°С от 20 минут. Туши разделывают на куски, весом 2 кг с толщиной и не более 8 см, и варят от 3 часов. Внутренняя температура кусочков в процессе варки должна достичь минимум +80°С, и цветом говядина должна стать светло-серой и не содержать кровяной сок.

Для засолки туши рубят на куски весом не более 2-2,5 кг. Время выдержки – 20 дней. Используемая соль берется в расчете 10% от общего веса мяса, предназначенного для соления. При этом раствор соли должен быть 24%-м.

Для заморозки необходимо достичь температуры в -10°С и ниже в толще мяса. Выдерживают заморозку в течение 10 дней.

Вред бычьего цепня для человека

Неважно, каким был источник заражения бычьим цепнем, но, проникнув в организм человека, паразит оказывает негативное воздействие на здоровье. Его обитание может привести к серьезным последствиям:

• воспалительным заболеваниям желудочно-кишечного тракта;
• нарушению работы кишечника;
• боли в животе;
• развитию непроходимости кишечника, запорам;
• нарушениям в работе иммунной системы;
• высыпаниями на коже, смене ее цвета.

Учитывая, что червь живет за счет питательных веществ организма, можно сделать вывод, что человек начинает испытывать дефицит многих витаминов и минералов.

Бычий цепень: пути заражения человека

Некоторые считают, что стоит только погладить больную корову — и заражение обеспечено, но это неверно. Существуют другие способы заражения:

1. Домашние животные. Ленточные черви довольно часто паразитируют в организме собак и кошек, поэтому они могут стать источником заражения.
2. Заразиться бычьим цепнем можно через рыбу и мясо. Если приобретать эти продукты на рынках, то их безопасность сложно гарантировать. А заметить яйца паразита невооруженным глазом практически невозможно.
3. Если в пищу употреблять плохо проваренное или прожаренное мясо или рыбу, то велик риск заразиться паразитом.
4. Источником заражения человека бычьим цепнем может стать сырое мясо. В нем могут быть яйца и финны паразита, поедание подобного продукта, а некоторые предпочитают такое мясо, грозит заражением.
5. Если разделывать зараженное мясо, а потом плохо помыть нож, то яйца цепня могут попасть на другие продукты, которые будут нарезаться данным прибором.

Как попадает в организм человека бычий цепень, как можно заразиться, фото выше в этой статье демонстрирует, а вот по каким симптомам распознать заболевание?

Классификация амеб: типы и виды

Амеба – виды этого паразиты многообразны. На сегодняшний день их существует целое множество, что значительно влияет на постановку диагноза. Видовая классификация это не единственная проблема — амебы в процессе своей жизни существуют в виде нескольких различных по своим свойствам форм.

На определенной стадии своего развития они паразитируют в организме, вызывая различные клинические проявления.

Основные стадии развития

Специалисты в области паразитологии, выделяют несколько основных форм амеб:

• тканевую;
• histolytica magna;
• просветную;
• предцистную.

Тканевая форма отличается минимальными размерами, которые не превышают 25 мкм. Обнаружить наличие данного паразита в организме, можно исключительно при остром течении патологии. В фекалиях выявить бактерии невозможно.

Форма E. histolytica magna активно поражает слизистую оболочку кишечника. Она проникает в его стенки, и приводит к образованию язв и гнойных ран. При длительном паразитировании бактерия способна увеличиваться в размерах до 80 мкм. Обнаружить ее можно в каловых массах.

Просветная форма. На данном этапе бактерия поддерживает тесную взаимосвязь с другими организмами, пользы или вреда от этого процесса, нет. Выявить наличие просветного типа паразита можно у людей, которые ранее страдали острой формой заболевания. Наличие данной разновидности бактерии, указывает на хроническое течение патологии. Нередко обнаруживаются амебы при бессимптомной форме болезни. Их длина не превышает 25 мкм.

Предцистная форма считается переходной, она развивается после просветной. Амебы отличаются минимальными размерами, не более 10-18 мкм. Обнаружить их сложно, в силу незначительного содержания в каловых массах.

Существующие разновидности простейших

Амеба – разновидности данного класса включает в себя как минимум 3 основных типа паразитов. Представители бактерий не имеют отличительных видовых характеристик. Они не образовывают раковину, размножаются исключительно бесполым путем, с помощью митотического деления. В природе выделяют несколько разновидностей паразитов:

• амеба протей;
• дизентерийную;
• кишечную.

Амеба протей

Первая разновидность проживает исключительно в несоленых водоемах, ее размеры не превышают 5 мм. Питается паразит исключительно водными продуктами, включая водоросли. Питание происходит с помощью псевдоподий. Этот процесс называется фагоцитозом. Размножение происходит путем деления материнских клеток на дочерние.

Если паразит проживает в неблагоприятных условиях, он превращается в цисту. В таком виде он устойчив к различным температурным показателям, высыханию и воздушным потокам.

Дизентерийная амеба

Преобладает исключительно в толстом кишечнике человека и водоемах. Попадая в организм, она вызывает тяжелое заболевание амебиаз. В ее жизненном цикла фиксируется три основных стадии: циста, мелкая вегетативная и крупная вегетативная форма, тканевая.

Проникновение в организм осуществляется через употребление зараженной пищи в форме цист. По своим габаритам, амеба характеризуется минимальными размерами. Мелкая вегетативная форма не вызывает негативные симптомы со стороны организма, она оседает в нижних отделах кишечника.

Если происходит внедрение паразита в стенку кишечника, это приводит к развитию язв и гнойных ран. Поражение кишечника сопровождается неприятными клиническими проявлениями. По мере прогрессирования, амеба переходит в тканевую форму. Для нее характерно паразитирование в кровеносных сосудах.

Кишечная амеба

Локализуется исключительно в толстом кишечнике. Основными питательными компонентами выступают частички растительной и животной пищи. Паразитируя в нижних отделах кишечника, провоцирует появление цист.

Непатогенные амебы

Выделяют определенные типы амеб, которые относятся к непатогенному классу. В эту категорию входит:

• кишечный паразит;
• амеба Гартмана;
• карликовая амеба;
• Иодамеба Бючли;
• Диэнтамеба;
• ротовая амеба.

Кишечный паразит

Кишечная форма паразита отличается небольшими размерами, в 20-40 мкм. В ее основе лежат небольшие микроорганизмы и частицы, одно эритроциты отсутствуют. У живых бактерий хорошо просматриваются ядра, которые выступают в роли отличительной характеристики.

При передвижении, паразит выполняет плавные и медленные движения одновременно в нескольких местах. Цисты характеризуются крупными размерами.

Амеба Гартмана

По своим характеристикам паразит схож с просветной формой и частично дизентерийным типом. Обнаружить бактерии можно в каловых массах, посредством диагностического исследования.

При подробном изучении, специалисты способны поставить неправильный диагноз. Обусловлено это отсутствием специфических внешних данных.

Карликовая амеба

Является самым мелким типом бактерии, что затрудняет процесс постановки диагноза. В ее основе лежат вакуоли, с немалым количеством бактерий и грибов. Передвижение трудное, заметить у паразита ядро, практически невозможно.

Диагностика производится путем использования раствора Люголя. Отличительной чертой амебы является ее мелкий размер и наличие четко выраженной оболочки.

Иодамеба Бючли

Размер данного паразита не превышает 20 мкм. Согласно видовым характеристикам, он схож на дизентерийную амебу. Главной отличительной чертой выступает наличие вакуолизированной цитоплазмы. При окрашивании бактерий раствором Люголя, они принимают темный оттенок. Подробное рассмотрение позволяет выявить четко очерченное ядро, форма паразита – правильная.

Диэнтамеба

Диэнтамеба – это паразит небольшого размера, его диаметр не превышает 20 мкм. Цитоплазма мутная, в ее основе лежит множество бактерий. Рассмотреть ядро можно при подробном изучении с помощью специальных окрашивающих препаратов. Наличие цист не обнаруживается.

При попадании в окружающую среду, бактерии погибают или разрушаются, они не приспособлены к неблагоприятным условиям.

Ротовая амеба

Встречается практически у всех людей, которые страдают заболеваниями ротовой полости. В некоторых случаях, бактерия обнаруживается при поражениях дыхательной системы. Ее размер не превышает 30 мкм, ядра практически незаметные, движение медленное.

НАШИ ЧИТАТЕЛИ РЕКОМЕНДУЮТ!

Для избавления от паразитов наши читатели успешно используют Intoxic. Видя, такую популярность этого средства мы решили предложить его и вашему вниманию.

Выявить наличие паразита помогают специальные мазки с использованием раствора хлорида натрия. Лаборанты берут соскоб зубного налета и гноя, при наличии его в верхнечелюстных пазухах.

Основные формы амебиаза

Проникая в организм человека, бактерии приводят к серьезным нарушениям в функционировании органов пищеварительной системы. Наиболее распространенным типом заболевания выступает амебиаз. Он бывает нескольких разновидностей:

• кишечный;
• острый;
• молниеносный;
• затяжной.

Кишечная форма

Кишечная форма заболевания характеризуется бессимптомным течением. Человек может быть носителем паразитов на протяжении нескольких лет, при этом не знать о наличии заболевания. За выделенный период, паразит активно поражает кишечник, провоцируя образования язв, ран с последующими осложнениями.

Острая форма

Острая форма заболевания начинается спонтанно. Сначала человека донимает постоянно нарушение стула с преобладающей диареей. Постепенно к общей клинической картине добавляется болевой синдром. В каловых массах находится незначительное количество крови и слизи. Если болезнь развилась у детей, наблюдается лихорадка и рвота.

Молниеносная форма

Молниеносная форма характеризуется тяжелым течением. Для нее характерно наличие острого токсического синдрома, с серьезным поражением стенок кишечника. Предрасположены к развитию патологии женщины в послеродовой период.

При отсутствии лечебного воздействия, сохраняется высокий риск летального исхода.

Затяжной амебиаз

Затяжной амебиаз сопровождается выраженными нарушениями моторики кишечника. У человека часто наблюдаются запоры и диарея. При этом фиксируется острый болевой синдром, тошнота и слабость. Больной отказывается принимать пищу.

Признаки заражения бычьим цепнем

Заболевание, которое провоцируется данным паразитическим червем, называется тениаринхоз. Если атаковал кишечник бычий цепень, симптомы у человека могут быть следующими:

• начинает снижаться вес, хотя рацион не менялся;
• пропадает аппетит;
• начинаются запоры;
• нарушение работы кишечника;
• болевые ощущения в животе;
• у человека нарушается сон, появляется излишняя раздражительность;
• быстрая утомляемость при любом виде работы;
• снижается внимание;
• при развитии червя симптомы усугубляются, развивается кишечная непроходимость;
• воспаление поджелудочной железы;
• признаки холецистита.

Если появляются данные симптомы, то надо посетить доктора, который назначит эффективные методы диагностики, а затем и терапию, которая поможет избавиться от паразита.

Диагностирование цистицеркоза

Диагноз чаще всего ставят посмертно. Прижизненная диагностика затруднена из-за стертости клинической картины.

Исследование слизистых оболочек

При обследовании внимание уделяют конъюнктиве и глазным оболочкам. В норме состоянии цвет конъюнктивы розоватого цвета. Изменение цвета, гиперемия, цианоз, желтушность являются общими признаками при многих инфекционных, сердечных и печеночных болезнях. Поэтому этот метод нельзя отнести к диагностике, а скорее к сбору анамнеза.

Также осматривают состояние слизистой рта и поверхности языка.

Исследование сердечнососудистой системы

Проверяют состояние сердечного толчка и пульса. Исследование проводят внешним осмотром и пальпацией. Толчок сердца у крупнорогатого скота можно прощупать на левой поверхности груди между 4-м и 5-м межреберьем. В норме это ощущается как легкое колебание.

Артериальная пульсация проверяется на наружной челюстной или бедренной артерии. Таким образом, определяют частоту и качество ударов, их ритмичность. В норме пульс у коров колеблется от 50 до 80 ударов в минуту.

Иммунологические методы

Для более точной диагностики разработаны методы:

• РЛА (реакция латекс агглютинации).
• РНГА (реакция непрямой гемагглютинации).
• Внутрикожная аллергическая проба.

В неблагополучных фермах часто используют РНГА сыворотки крови, и положительные результаты доходят до 93%. Хотя каждый из методов требует доработки, и поэтому мало применяются в широкой практике.

Иногда применяют способ фагоцитарной активности нейтрофилов. Метод диагностики прост для применения, но пока не востребован.

В основном используется посмертная диагностика, которая основана на послеубойном осмотре туш. Финнозу больше всего подвержены передние части тела, в частности жевательные мышцы, сердце и т. д. Для совершения осмотра делаются продольные и поперечные разрезы.

Процедура проводится с применением лампы ОЛД-41. С ее помощью эффективность осмотра становится выше. Проведение процедуры необходимо обеспечить в затемненном пространстве, без освещения. Для этого включают лампу и освещают разрезы в течение 5-7 минут.

Диагностика тениаринхоза

Самостоятельно наличие паразитов в своем организме заподозрить, конечно же, можно, но поставить точный диагноз способен только врач. Существуют следующие способы обнаружения паразита в организме:

1. Доктор беседует с пациентом, выслушивает его жалобы. Объясняет, как происходит заражение бычьим цепнем, и выясняет, были ли у пациента такие ситуации.
2. Дается направление на анализ кала.
3. Анализ крови позволит выявить воспалительные процессы. При наличии паразита в организме, как правило, анализ показывает повышенное количество эозинофилов, недостаток гемоглобина и эритроцитов, а лейкоциты повышаются.
4. Используются серологические реакции для обнаружения антител к антигенам паразитического червя.
5. Возможно, понадобится рентгенологическое исследование кишечника.

После получения всех данных исследования доктор ставит окончательный диагноз.

Надо знать, что самостоятельно диагностировать заболевание, а тем более назначать себе терапию может быть опасно.

Клиническая картина

Проявляемые симптомы в начальной стадии схожи со многими другими заболеваниями. Вследствие этого затрудняется диагностика цистицеркоза.

Симптомы, которые могут вызвать подозрение о наличии цестод в организме коров:

• Повышенная температура тела – 40-41°.
• Угнетенное состояние, отсутствие жвачки.
• Снижение или отсутствие аппетита.
• Понос, который заканчивается атонией преджелудков и завалом рубца.

У телят заболевание протекает в более тяжелой форме, чем у взрослых животных. Они подолгу лежат, иногда может наблюдаться зуд кожи, отеки и асциты. Возникают одышка и тахикардия. Если надавить в области правой стороны живота, грудины – животные проявляют беспокойство.

Изменений со стороны лимфоузлов нет. По истечению 7-12 дней симптомы проходят. При повторном заражении таких признаков не бывает, инвазия протекает в скрытой форме. При слабой инвазии и при хороших условиях содержания болезнь протекает бессимптомно.

При экспериментальном заражении цестодами у телят на 7-й день происходило снижение температуры тела, а в последующие сутки они погибали.

При выявлении у коров всех этих признаков цистицеркоза необходимо незамедлительно обратиться к ветеринарным службам.

Осложнения, которые развиваются в результате заражения паразитом

Как развивается бычий цепень, как можно заразиться им, мы уже рассмотрели. Идем далее.

Если паразит поселился в кишечнике, то без эффективного лечения избавиться от него не получится. А полное отсутствие такового чревато серьезными осложнениями. Это кишечная непроходимость. Опасным осложнением является цистицеркоз. Он развивается в результате проникновения зародышей солитера в глаза, головной мозг, подкожно-жировую клетчатку, сердечную мышцу, легкие. Установить патологию можно путем клинических исследований и офтальмоскопии.

Для профилактики различных осложнений необходимо как можно быстрее поставить точный диагноз и приступить к лечению.

Как можно избавиться от бычьего цепня

На консультации специалиста можно узнать, что собой представляет бычий цепень, как можно заразиться им и что предпринять, чтобы избавиться от паразита. Лечение, как правило, подразумевает использование дегельминтиков. Эти препараты помогают открепить червя от стенок кишечника и вывести его наружу. К таким лекарствам предъявляются следующие требования:

• эффективность;
• минимальное токсическое воздействие на организм человека;
• удобный способ приема;
• быстрое встраивание в метаболизм;
• приемлемая стоимость.

Обычно терапия проводится амбулаторно после консультации с врачом. Эффективность лечения оценивается по отсутствию выделений члеников с калом последующие несколько месяцев.

Профилактика

Профилактические мероприятия исходят из способов заражения паразитом. Поэтому следует придерживаться таких правил:

• вакцинация домашних животных, а также профилактический прием ими противопаразитных препаратов в теплое время года;
• приобретение говядины в торговых точках с сертификатами качества;
• правильная термическая обработка мясных продуктов;
• обработка ножа и доски после разделки мяса;
• ограничение употребления сырого мяса;
• минимизация контактов с больным.

Также следует соблюдать элементарные правила гигиены (мытье рук) и санитарные нормы и научить этому своих детей. Если проживающий в одном доме член семьи заболел тениаринхозом, нужно тщательно проводить уборку с применением дезинфицирующих средств. Больной в этот период должен ежедневно менять постельное и нательное белье.

Использование для лечения глистогонных растений

Не только терапия, но и профилактика вполне эффективны, если применять готовые составы, в которые включены глистогонные растения. Эти средства отличаются некоторыми преимуществами перед синтетическими препаратами:

• в результате терапии не возникают побочные явления;
• в их состав входят редкие ингредиенты, например медвежья желчь, которая способна расщеплять яйца паразитов;
• большое количество растений, входящих в состав, обеспечивает универсальность применения препаратов, они помогают избавиться сразу от нескольких паразитов;
• практически не требуется время, чтобы приготовить средство к употреблению.

Перед использованием таких средств желательно проконсультироваться с врачом, потому что наличие некоторых хронических патологий может быть противопоказанием к такой терапии.

Лечебные мероприятия

Действующих лечебных схем нет. Терапия гельминтоза сводится к профилактическим мероприятиям. Однако есть попытки вылечить цистицеркоз препаратом. Празиквантел (Дронцит). Празиквантел вводят в дозе 50 мг на 1 кг веса 2 дня подряд. Иногда еще применяют Фенбендазол, Панакур. Стоит отметить, что эффект от метода полностью не доказан, так как затруднена прижизненная диагностика цистицеркоза. В связи с чем невозможно отследить динамику лечебного действия.

Тема №5154 Ос­нов­ные типы беспозвоночных (Часть 1)

Тема №5154

На этой странице вы изучите Ос­нов­ные типы беспозвоночных (Часть 1) из предмета Биология, в предложенной теме также освящены и другие вопросы по Биология. Если у вас появились новые вопросы, спрашивайте в комментариях.

1. За­да­ние 12  К ка­ко­му типу жи­вот­ных от­но­сят ас­ка­ри­ду?

 

1) Плос­кие черви

2) Круг­лые черви

3) Коль­ча­тые черви

4) Рес­нич­ные черви

Ответ: 2

2. За­да­ние 12  У жи­вот­ных-па­ра­зи­тов, по срав­не­нию со сво­бод­но­жи­ву­щи­ми, в про­цес­се эво­лю­ции про­изо­шло

 

1) услож­не­ние стро­е­ния и жиз­не­де­я­тель­но­сти

2) упро­ще­ние стро­е­ния и жиз­не­де­я­тель­но­сти

3) услож­не­ние стро­е­ния, но упро­ще­ние жиз­не­де­я­тель­но­сти

4) упро­ще­ние стро­е­ния, но услож­не­ние жиз­не­де­я­тель­но­сти

Ответ: 2

3. За­да­ние 12  За­ра­же­ние че­ло­ве­ка бы­чьим цеп­нем может про­изой­ти при упо­треб­ле­нии

 

1) в пищу не­мы­тых ово­щей

2) воды из сто­я­че­го во­до­е­ма

3) мяса, за­ра­жен­но­го его ли­чин­ка­ми

4) плохо вы­мы­той по­су­ды, ко­то­рой поль­зо­вал­ся боль­ной

Ответ: 3

4. За­да­ние 12  Взрос­лая че­ло­ве­че­ская ас­ка­ри­да оби­та­ет в

 

1) пе­че­ни

2) лег­ких

3) ки­шеч­ни­ке

4) го­лов­ном мозге

Ответ: 3

5. За­да­ние 12  При­спо­соб­ле­ния бы­чье­го цепня к па­ра­зи­ти­че­ско­му об­ра­зу жизни, упро­ще­ние его ор­га­ни­за­ции — при­мер

 

1) общей де­ге­не­ра­ции

2) аро­мор­фо­за

3) идио­адап­та­ции

4) био­ло­ги­че­ско­го ре­грес­са

Ответ: 1

6. За­да­ние 12  У чер­вей-па­ра­зи­тов со сме­ной хо­зя­ев по­ло­вое раз­мно­же­ние про­ис­хо­дит в

 

1) ор­га­низ­ме ос­нов­но­го хо­зя­и­на

2) ор­га­низ­ме про­ме­жу­точ­но­го хо­зя­и­на

3) на­зем­но-воз­душ­ной среде

4) почве и вод­ной среде

Ответ: 1

7. За­да­ние 12  Какое жи­вот­ное яв­ля­ет­ся про­ме­жу­точ­ным хо­зя­и­ном пе­че­ноч­но­го со­саль­щи­ка

 

1) со­ба­ка

2) че­ло­век

3) ко­ро­ва

4) малый пру­до­вик

Ответ: 4

8. За­да­ние 12  Какие груп­пы жи­вот­ных не ис­поль­зу­ют в про­цес­се ды­ха­ния кис­ло­род?

 

1) дож­де­вые черви и дру­гие оби­та­те­ли почвы

2) ли­чин­ки на­се­ко­мых, оби­та­ю­щие под корой де­ре­вьев

3) ас­ка­ри­да и дру­гие черви-па­ра­зи­ты

4) скаты и дру­гие оби­та­те­ли мор­ских глу­бин

Ответ: 3

9. За­да­ние 12  На плохо вы­мы­тых ово­щах могут со­хра­нять­ся яйца

 

1) ши­ро­ко­го лен­те­ца

2) бычий це­пень

3) печёноч­но­го со­саль­щи­ка

4) ас­ка­ри­ды

Ответ: 4

10. За­да­ние 12  Кровь у дож­де­во­го червя

 

1) за­пол­ня­ет про­ме­жут­ки между ор­га­на­ми

2) течет в кро­ве­нос­ных со­су­дах

3) вы­ли­ва­ет­ся в пар­ные вы­де­ли­тель­ные тру­боч­ки

4) из по­ло­сти тела по­па­да­ет в ки­шеч­ник

Ответ: 2

11. За­да­ние 12  Оби­та­ет в тон­ком ки­шеч­ни­ке и пи­та­ет­ся пе­ре­ва­рен­ной пищей хо­зя­и­на

 

1) ост­ри­ца

2) бычий це­пень

3) белая пла­на­рия

4) пе­че­ноч­ный со­саль­щик

Ответ: 2

12. За­да­ние 12  У чер­вей-па­ра­зи­тов со сме­ной хо­зя­ев по­ло­вое раз­мно­же­ние про­ис­хо­дит в

 

1) ор­га­низ­ме ос­нов­но­го хо­зя­и­на

2) ор­га­низ­ме про­ме­жу­точ­но­го хо­зя­и­на

3) на­зем­но-воз­душ­ной среде

4) почве и вод­ной среде

Ответ: 1

13. За­да­ние 12  Ас­ка­ри­ды не уда­ля­ют­ся из ки­шеч­ни­ка вме­сте с не­пе­ре­ва­рен­ной пищей, так как

 

1) об­ла­да­ют боль­шой пло­до­ви­то­стью

2) могут жить в бес­кис­ло­род­ной среде

3) спо­соб­ны пе­ре­ме­щать­ся в на­прав­ле­нии, про­ти­во­по­лож­ном дви­же­нию пищи

4) на по­кро­вы их тела не дей­ству­ет пи­ще­ва­ри­тель­ный сок

Ответ: 3

14. За­да­ние 12  Кро­ве­нос­ную си­сте­му имеют

 

1) плос­кие черви

2) круг­лые черви

3) гидры

4) коль­ча­тые черви

Ответ: 4

15. За­да­ние 12  Пер­вич­ную по­лость тела имеют

 

1) плос­кие черви

2) круг­лые черви

3) коль­ча­тые черви

4) мол­люс­ки

Ответ: 2

16.

За­да­ние 12  Вто­рич­ную по­лость тела имеют

 

1) плос­кие черви

2) круг­лые черви

3) коль­ча­тые черви

4) гидры

Ответ: 3

17. За­да­ние 12  Не имеют по­ло­сти тела

 

1) плос­кие черви

2) круг­лые черви

3) коль­ча­тые черви

4) гидры

Ответ: 1

18. За­да­ние 12  К ка­ко­му типу от­но­сят жи­вот­ных, у ко­то­рых от­сут­ству­ет по­лость тела, а про­ме­жут­ки между ор­га­на­ми за­пол­не­ны рых­лой со­еди­ни­тель­ной тка­нью?

 

1) мол­люс­ков

2) круг­лых чер­вей

3) коль­ча­тых чер­вей

4) плос­ких чер­вей

Ответ: 4

19. За­да­ние 12  Лу­че­вую сим­мет­рию тела не имеет

 

1) ме­ду­за-кор­нер­от

2) белая пла­на­рия

3) прес­но­вод­ная гидра

4) крас­ный ко­ралл

Ответ: 2

20. За­да­ние 12  У па­ра­зи­ти­че­ских чер­вей по­кро­вы тела

 

1) снаб­же­ны рес­нич­ка­ми

2) по­кры­ты чешуёй

3) со­сто­ят из хи­ти­на

4) не рас­тво­ря­ют­ся пи­ще­ва­ри­тель­ны­ми со­ка­ми

Ответ: 4

21. За­да­ние 12 

 Вза­и­мо­дей­ствие че­ло­ве­ка и бы­чье­го цепня на­зы­ва­ет­ся

 

1) сим­би­о­зом

2) хищ­ни­че­ством

3) па­ра­зи­тиз­мом

4) про­то­ко­опе­ра­ци­ей

Ответ: 3

22. За­да­ние 12  Стен­ка тела плос­ких чер­вей пред­став­ле­на

 

1) толь­ко кожей

2) на­руж­ным хи­ти­но­вым ске­ле­том

3) ра­ко­ви­ной

4) кожно-му­скуль­ным меш­ком

Ответ: 4

23. За­да­ние 12  Сво­бод­но­жи­ву­щим видом яв­ля­ет­ся

 

1) пла­на­рия

2) ши­ро­кий лен­тец

3) эхи­но­кокк

4) дву­уст­ка

Ответ: 1

24. За­да­ние 12 

 Внут­рен­ние ор­га­ны белой пла­на­рии по­ме­ща­ют­ся

 

1) в пер­вич­ной по­ло­сти тела

2) во вто­рич­ной по­ло­сти тела

3) в рых­лой па­рен­хи­ме

4) в ки­шеч­ной по­ло­сти

Ответ: 3

25. За­да­ние 12  Ды­ха­ние пла­на­рии про­ис­хо­дит

 

1) диф­фуз­но через по­кро­вы тела

2) с по­мо­щью на­руж­ных вы­ро­стов – жабр

3) с по­мо­щью внут­рен­них жабр

4) с по­мо­щью лёгоч­ных меш­ков

Ответ: 1

26. За­да­ние 12  Нерв­ная си­сте­ма плос­ких чер­вей

 

1) диф­фуз­но­го типа

2) лест­нич­но­го типа

3) труб­ча­то­го типа

4) от­сут­ству­ет

Ответ: 2

27. За­да­ние 12  Ос­нов­ным хо­зя­и­ном бы­чье­го цепня яв­ля­ет­ся

 

1) бык

2) че­ло­век

3) овца

4) ло­шадь

Ответ: 2

28. За­да­ние 12  Финна бы­чье­го цепня обыч­но раз­ви­ва­ет­ся

 

1) во внеш­ней среде

2) в мыш­цах и внут­рен­них ор­га­нах че­ло­ве­ка

3) в мыш­цах и внут­рен­них ор­га­нах ко­ро­вы

4) в мыш­цах и внут­рен­них ор­га­нах со­ба­ки

Ответ: 3

29. За­да­ние 12  Финны эхи­но­кок­ка об­ра­зу­ют­ся

 

1) в го­лов­ном мозге

2) в лёгких

3) в пе­че­ни

4) во всех пе­ре­чис­лен­ных ор­га­нах

Ответ: 4

30. За­да­ние 12  На­се­ля­ет тон­кий ки­шеч­ник, не имеет раз­ви­той пи­ще­ва­ри­тель­ной си­сте­мы

 

1) белая пла­на­рия

2) бычий це­пень

3) печёноч­ный со­саль­щик

4) ко­ша­чья дву­уст­ка

Ответ: 2

31. За­да­ние 12  В цикле раз­ви­тия плос­ких чер­вей на­блю­да­ет­ся смена хо­зя­ев? Где про­ис­хо­дит цикл раз­ви­тия печёноч­но­го со­саль­щи­ка

 

1) в ор­га­низ­мах ма­ло­го пру­до­ви­ка и круп­но­го ро­га­то­го скота

2) в ор­га­низ­мах круп­но­го ро­га­то­го скота и че­ло­ве­ка

3) в ор­га­низ­мах сель­ско­хо­зяй­ствен­ных жи­вот­ных и со­ба­ки

4) все от­ве­ты оши­боч­ны

Ответ: 1

32. За­да­ние 12  Кого от­но­сят к рес­нич­ным чер­вям

 

1) бы­чье­го цепня

2) сви­но­го цепня

3) эхи­но­кок­ка

4) мо­лоч­но-белую пла­на­рию

Ответ: 4

33. За­да­ние 12  Ли­чин­ка ши­ро­ко­го лен­те­ца раз­ви­ва­ет­ся в теле

 

1) со­ба­ки

2) че­ло­ве­ка

3) ма­ло­го пру­до­ви­ка

4) цик­ло­па и рыбы

Ответ: 4

34. За­да­ние 12  У па­ра­зи­ти­че­ских чер­вей в про­цес­се эво­лю­ции

 

1) по­яви­лись глаза

2) воз­ник гер­ма­фро­ди­тизм

3) ре­ду­ци­ро­ва­лось аналь­ное от­вер­стие

4) воз­ник­ли ор­га­ны при­креп­ле­ния к ор­га­низ­му хо­зя­и­на

Ответ: 4

35. За­да­ние 12  Какое из пе­ре­чис­лен­ных жи­вот­ных не имеет аналь­но­го от­вер­стия

 

1) ас­ка­ри­да

2) лан­цет­ник

3) белая пла­на­рия

4) дож­де­вой червь

Ответ: 3

36. За­да­ние 12  Наи­бо­лее силь­ной ре­дук­ции си­сте­мы ор­га­нов под­верг­лись у

 

1) не­ре­иды

2) бы­чье­го цепня

3) ост­ри­цы

4) пла­тя­ной вши

Ответ: 2

37. За­да­ние 12  Мно­го­кле­точ­ных дву­сто­рон­не-сим­мет­рич­ных жи­вот­ных удлинённой формы, не раз­делённых на чле­ни­ки, име­ю­щих по­лость тела, от­но­сят к типу

 

1) плос­кие черви

2) круг­лые черви

3) ки­шеч­но­по­лост­ные

4) коль­ча­тые черви

Ответ: 2

38. За­да­ние 12  У круг­лых чер­вей в от­ли­чие от плос­ких по­лость тела за­пол­не­на

 

1) кро­вью

2) воз­ду­хом

3) жид­ко­стью

4) па­рен­хи­мой

Ответ: 3

39. За­да­ние 12  По­лость тела круг­лых чер­вей

 

1) пер­вич­ная

2) вто­рич­ная – целом

3) ки­шеч­ная – га­страль­ная

4) от­сут­ству­ет

Ответ: 1

40. За­да­ние 12  В кожно-му­скуль­ном мешке ас­ка­ри­ды му­ску­ла­ту­ра пред­став­ле­на

 

1) толь­ко коль­це­вы­ми мыш­ца­ми

2) толь­ко ко­сы­ми мыш­ца­ми

3) толь­ко про­доль­ны­ми мыш­ца­ми

4) всеми пе­ре­чис­лен­ны­ми ти­па­ми мышц

Ответ: 3

41. За­да­ние 12  У круг­лых чер­вей от­сут­ству­ет

 

1) по­лость тела

2) вы­де­ли­тель­ная си­сте­ма

3) нерв­ная си­сте­ма

4) кро­ве­нос­ная си­сте­ма

Ответ: 4

42. За­да­ние 12  Пи­ще­ва­ри­тель­ная си­сте­ма ас­ка­ри­ды че­ло­ве­че­ской в от­ли­чие от плос­ких чер­вей

 

1) ли­ше­на ки­шеч­ни­ка

2) ли­ше­на ро­то­во­го от­вер­стия

3) имеет аналь­ное от­вер­стие

4) ли­ше­на аналь­но­го от­вер­стия

Ответ: 3

43. За­да­ние 12  За­ра­же­ние че­ло­ве­че­ской ас­ка­ри­дой про­ис­хо­дит при

 

1) по­еда­нии сы­ро­го мяса

2) по­еда­нии сырой рыбы

3) не­со­блю­де­нии норм лич­ной ги­ги­е­ны

4) за­ра­же­нии ран и по­ре­зов

Ответ: 3

44. За­да­ние 12  При пе­ре­хо­де от плос­ких к круг­лым чер­вям про­изо­шли сле­ду­ю­щие аро­мор­фо­зы

 

1) по­яви­лась по­лость тела

2) по­яви­лась кро­ве­нос­ная си­сте­ма

3) по­яви­лись ор­га­ны ды­ха­ния

4) по­яви­лись спе­ци­а­ли­зи­ро­ван­ные ор­га­ны дви­же­ния

Ответ: 1

45. За­да­ние 12  Тело не раз­де­ле­но на чле­ни­ки у

 

1) на­се­ко­мых

2) ра­ко­об­раз­ных

3) круг­лых чер­вей

4) коль­ча­тых чер­вей

Ответ: 3

46. За­да­ние 12  Пе­ре­ва­ри­ва­ние дож­де­вы­ми чер­вя­ми рас­ти­тель­ных остат­ков спо­соб­ству­ет

 

1) пе­ре­ме­ши­ва­нию почвы

2) про­ник­но­ве­нию в почву воз­ду­ха

3) обо­га­ще­нию почвы ор­га­ни­че­ски­ми ве­ще­ства­ми

4) про­ник­но­ве­нию в почву влаги

Ответ: 3

47. За­да­ние 12  Жи­вот­ные, ка­ко­го типа имеют наи­бо­лее вы­со­кий уро­вень ор­га­ни­за­ции

 

1) ки­шеч­но­по­лост­ные

2) плос­кие черви

3) коль­ча­тые черви

4) круг­лые черви

Ответ: 3

48. За­да­ние 12  По­лость тела у коль­ча­тых чер­вей

 

1) за­пол­не­на рых­лой па­рен­хи­мой

2) пер­вич­ная, за­пол­не­на жид­ко­стью, не имеет соб­ствен­ной вы­стил­ки

3) вто­рич­ная, за­пол­не­на це­ло­ми­че­ской жид­ко­стью, имеет вы­стил­ку

4) га­страль­ная

Ответ: 3

49. За­да­ние 12  В от­ли­чие от плос­ких и круг­лых чер­вей у коль­ча­тых чер­вей име­ет­ся

 

1) нерв­ная си­сте­ма

2) кро­ве­нос­ная си­сте­ма

3) вы­де­ли­тель­ная си­сте­ма

4) пи­ще­ва­ри­тель­ная си­сте­ма

Ответ: 2

50. За­да­ние 12  Нерв­ная си­сте­ма дож­де­во­го червя пред­став­ле­на

 

1) диф­фуз­но раз­бро­сан­ны­ми по всему телу нерв­ны­ми клет­ка­ми

2) око­ло­гло­точ­ным нерв­ным коль­цом и брюш­ной нерв­ной це­поч­кой

3) го­лов­ны­ми нерв­ны­ми уз­ла­ми и от­хо­дя­щи­ми от них ство­ла­ми

4) спин­ным ство­лом

Ответ: 2

51. За­да­ние 12  Дож­де­вые черви, про­кла­ды­вая в почве ходы

 

1) спо­соб­ству­ют об­ра­зо­ва­нию в рас­те­ни­ях ор­га­ни­че­ских ве­ществ

2) улуч­ша­ют усло­вия ды­ха­ния кор­ней

3) вли­я­ют на ско­рость пе­ре­дви­же­ния в рас­те­ни­ях ми­не­раль­ных ве­ществ

4) вли­я­ют на ско­рость пе­ре­дви­же­ния в рас­те­ни­ях ор­га­ни­че­ских ве­ществ

Ответ: 2

52. За­да­ние 12  Раз­дель­но­по­ло­стью об­ла­да­ет

 

1) пе­че­ноч­ный со­саль­щик

2) ас­ка­ри­да

3) дож­де­вой червь

4) малый пру­до­вик

Ответ: 2

53. За­да­ние 12  В финну пре­вра­ща­ет­ся ли­чин­ка

 

1) пе­че­ноч­но­го со­саль­щи­ка

2) коль­ча­то­го червя

3) бы­чье­го цепня

4) белой пла­на­рии

Ответ: 3

54. За­да­ние 12  Чей цикл раз­ви­тия пред­став­лен на ри­сун­ке?

 

1) пе­че­ноч­но­го со­саль­щи­ка

2) бы­чье­го цепня

3) гид­ро­ид­но­го по­ли­па

4) яйца акулы

Ответ: 2

55. За­да­ние 12  Брюш­ная нерв­ная це­поч­ка об­ра­зу­ет нерв­ную си­сте­му

 

1) ки­шеч­но­по­лост­ных

2) лен­точ­ных чер­вей

3) коль­ча­тых чер­вей

4) рыб и зем­но­вод­ных

Ответ: 3

56. За­да­ние 12  К ка­ко­му типу жи­вот­ных от­но­сят ас­ка­ри­ду

 

1) Плос­кие черви

2) Круг­лые черви

3) Коль­ча­тые черви

4) Рес­нич­ные черви

Ответ: 2

57. За­да­ние 12 . К типу Плос­кие черви от­но­сит­ся

 

1) ас­ка­ри­да

2) ост­ри­ца

3) пла­на­рия

4) пи­яв­ка

Ответ: 3

58. За­да­ние 12 . Не ведёт при­креп­лен­ный образ жизни

 

 

1) губка бо­дя­га

2) ак­ти­ния

3) ко­рал­ло­вый полип

4) ас­ка­ри­да че­ло­ве­че­ская

Ответ: 4

59. За­да­ние 12 . Тип бес­по­зво­ноч­ных, у пред­ста­ви­те­лей ко­то­ро­го впер­вые в жи­вот­ном мире по­яви­лась сквоз­ная пи­ще­ва­ри­тель­ная си­сте­ма, — это

 

1) Плос­кие черви

2) Коль­ча­тые черви

3) Чле­ни­сто­но­гие

4) Круг­лые черви

Ответ: 4

60. За­да­ние 12 . Про­ме­жу­точ­ным хо­зя­и­ном бы­чье­го цепня яв­ля­ет­ся

 

1) че­ло­век

2) ко­ро­ва

3) малый пру­до­вик

4) рачок цик­лоп

Ответ: 2

61. За­да­ние 12 . У коль­ча­тых чер­вей впер­вые в про­цес­се эво­лю­ции по­яви­лась си­сте­ма

 

1) пи­ще­ва­ри­тель­ная

2) нерв­ная

3) кро­ве­нос­ная

4) вы­де­ли­тель­ная

Ответ: 3

62. За­да­ние 12 . В про­цес­се эво­лю­ции три слоя кле­ток впер­вые воз­ник­ли у чер­вей

 

1) плос­ких

2) круг­лых

3) ма­ло­ще­тин­ко­вых

4) мно­го­ще­тин­ко­вых

Ответ: 1

63. За­да­ние 12 . У сво­бод­но­жи­ву­ще­го плос­ко­го червя белой пла­на­рии, в от­ли­чие от печёноч­но­го со­саль­щи­ка,

 

1) тело имеет дву­сто­рон­нюю сим­мет­рию

2) жиз­нен­ный цикл про­ис­хо­дит со сме­ной хо­зя­ев

3) име­ет­ся вы­де­ли­тель­ная си­сте­ма

4) нерв­ная си­сте­ма и ор­га­ны чувств лучше раз­ви­ты

Ответ: 4

64. За­да­ние 12 . Ос­нов­ным хо­зя­и­ном па­ра­зи­та на­зы­ва­ют ор­га­низм,

 

1) для ко­то­ро­го ха­рак­тер­но бес­по­лое раз­мно­же­ние

2) в ко­то­ром про­ис­хо­дит по­ло­вое раз­мно­же­ние па­ра­зи­та

3) ко­то­ро­му па­ра­зит при­но­сит наи­боль­ший вред

4) в ко­то­ром по­се­ля­ет­ся ли­чин­ка па­ра­зи­та

Ответ: 2

65. За­да­ние 12 . Какая си­сте­ма ор­га­нов дож­де­во­го червя вы­де­ле­на на ри­сун­ке тёмным цве­том?

 

 

1) вы­де­ли­тель­ная

2) кро­ве­нос­ная

3) пи­ще­ва­ри­тель­ная

4) нерв­ная

Ответ: 3

66. За­да­ние 12 . Какую функ­цию вы­пол­ня­ют ор­га­ны бы­чье­го цепня, обо­зна­чен­ные на ри­сун­ке во­про­си­тель­ным зна­ком?

 

1) при­креп­ле­ние червя к стен­ке ки­шеч­ни­ка хо­зя­и­на

2) вса­сы­ва­ние пи­та­тель­ных ве­ществ из ки­шеч­ни­ка хо­зя­и­на

3) по­гло­ще­ние ча­стиц пищи и их пе­ре­ва­ри­ва­ние

4) вы­де­ле­ние ве­ществ, за­щи­ща­ю­щих тело от пе­ре­ва­ри­ва­ния

Ответ: 1

67. За­да­ние 12 . У коль­ча­тых чер­вей, в от­ли­чие от круг­лых, есть

 

1) дву­сто­рон­няя сим­мет­рия

2) сквоз­ной ки­шеч­ник

3) нерв­ная си­сте­ма

4) кро­ве­нос­ная си­сте­ма

Ответ: 4

68. За­да­ние 12 . До­ка­за­тель­ством трёхслой­но­го стро­е­ния тела дож­де­во­го червя яв­ля­ет­ся на­ли­чие у него

 

1) кож­но­го эпи­те­лия

2) ки­шеч­ни­ка

3) мышц

4) нерв­ных узлов

Ответ: 3

69. За­да­ние 12 . Кто яв­ля­ет­ся про­ме­жу­точ­ным хо­зя­и­ном печёноч­но­го со­саль­щи­ка?

 

1) малый пру­до­вик

2) ля­гуш­ка

3) ко­ро­ва

4) че­ло­век

Ответ: 1

70. За­да­ние 12 . Кто из пе­ре­чис­лен­ных чер­вей не яв­ля­ет­ся па­ра­зи­том?

 

1) бычий це­пень

2) белая пла­на­рия

3) печёноч­ный со­саль­щик

4) ас­ка­ри­да

Ответ: 2

71. За­да­ние 12 . В про­цес­се эво­лю­ции три слоя кле­ток впер­вые воз­ник­ли у чер­вей

 

1) круг­лых

2) плос­ких

3) ма­ло­ще­тин­ко­вых

4) мно­го­ще­тин­ко­вых

Ответ: 2

72. За­да­ние 12 . В каком ор­га­не тела че­ло­ве­ка оби­та­ют взрос­лые особи че­ло­ве­че­ской ас­ка­ри­ды?

 

1) ки­шеч­ни­ке

2) же­луд­ке

3) лёгких

4) спин­но-моз­го­вом ка­на­ле

Ответ: 1

73. За­да­ние 12 . Вы­бе­ри­те вер­ную ха­рак­те­ри­сти­ку бес­по­зво­ноч­но­го жи­вот­но­го.

 

1) У коль­ча­тых чер­вей име­ет­ся кро­ве­нос­ная си­сте­ма.

2) Плос­кие черви имеют ро­то­вое и аналь­ное от­вер­стия.

3) Мол­люс­ки об­ла­да­ют лу­че­вой сим­мет­ри­ей.

4) В чле­ни­ках круг­лых па­ра­зи­ти­че­ских чер­вей со­дер­жат­ся яйца.

Ответ: 1

74. За­да­ние 12 . Белая пла­на­рия от­ли­ча­ет­ся от ме­ду­зы ауре­лии

 

1) спо­соб­но­стью к по­ло­во­му раз­мно­же­нию

2) мно­го­кле­точ­но­стью

3) на­ли­чи­ем нерв­ных кле­ток

4) типом сим­мет­рии

Ответ: 4

75. За­да­ние 12 . Вы­бе­ри­те из пред­ло­жен­ных ва­ри­ан­тов наи­бо­лее точ­ное опи­са­ние нерв­ной си­сте­мы ма­ло­ще­тин­ко­вых чер­вей.

 

1) слу­чай­но раз­бро­сан­ные по телу нерв­ные клет­ки, об­ра­зу­ю­щие сеть

2) два нерв­ных ство­ла вдоль тела с пе­ре­мыч­ка­ми между ними

3) це­поч­ка нерв­ных узлов на брюш­ной сто­ро­не и око­ло­гло­точ­ное коль­цо

4) ствол нерв­ных кле­ток с силь­ным утол­ще­ни­ем на го­лов­ном конце

Ответ: 3

76. За­да­ние 12 . Вы­бе­ри­те из пред­ло­жен­ных ва­ри­ан­тов наи­бо­лее точ­ное опи­са­ние вы­де­ли­тель­ной си­сте­мы ма­ло­ще­тин­ко­вых чер­вей.

 

1) вы­де­ле­ние про­ис­хо­дит через по­кро­вы

2) пар­ные про­то­не­фри­дии в зад­нем от­де­ле тела

3) пар­ные ме­та­неф­ри­дии в каж­дом сег­мен­те тела

4) лен­то­вид­ные почки в сред­нем сег­мен­те тела

Ответ: 3

1. За­да­ние 12  Жи­вот­ные, как пра­ви­ло, пи­та­ют­ся

 

1) толь­ко ми­не­раль­ны­ми ве­ще­ства­ми

2) ор­га­ни­че­ски­ми ве­ще­ства­ми, ко­то­рые сами про­из­во­дят из не­ор­га­ни­че­ских

3) го­то­вы­ми ор­га­ни­че­ски­ми ве­ще­ства­ми

4) ве­ще­ства­ми, ко­то­рые об­ра­зу­ют­ся в клет­ках тела при окис­ле­нии ор­га­ни­че­ских ве­ществ

Ответ: 3

2. За­да­ние 12  Какая ткань со­став­ля­ет у че­ло­ве­ка ос­но­ву мышц ко­неч­но­стей

 

1) глад­кая мы­шеч­ная

2) по­пе­реч­но­по­ло­са­тая ске­лет­ная

3) эпи­те­ли­аль­ная

4) со­еди­ни­тель­ная

Ответ: 2

3. За­да­ние 12  Сход­ные по стро­е­нию, функ­ци­ям и про­ис­хож­де­нию клет­ки об­ра­зу­ют

 

1) ткани

2) ор­га­ны

3) си­сте­мы ор­га­нов

4) ор­га­низм

Ответ: 1

4. За­да­ние 12  Какая груп­па тка­ней об­ла­да­ет свой­ства­ми воз­бу­ди­мо­сти и со­кра­ти­мо­сти

 

1) мы­шеч­ная

2) эпи­те­ли­аль­ная

3) нерв­ная

4) со­еди­ни­тель­ная

Ответ: 1

5. За­да­ние 12  Функ­ции меж­кле­точ­но­го ве­ще­ства в крови вы­пол­ня­ет

 

1) плаз­ма

2) сы­во­рот­ка

3) тка­не­вая жид­кость

4) лимфа

Ответ: 1

6. За­да­ние 12  Из­ме­не­ние диа­мет­ра кро­ве­нос­ных со­су­дов про­ис­хо­дит за счет ткани

 

1) эпи­те­ли­аль­ной

2) со­еди­ни­тель­ной

3) глад­кой мы­шеч­ной

4) по­пе­реч­но­по­ло­са­той мы­шеч­ной

Ответ: 3

7. За­да­ние 12  Воз­ду­хо­нос­ные пути че­ло­ве­ка вы­стла­ны из­нут­ри тка­нью

 

1) со­еди­ни­тель­ной

2) мы­шеч­ной по­пе­реч­но­по­ло­са­той

3) эпи­те­ли­аль­ной

4) мы­шеч­ной глад­кой

Ответ: 3

8. За­да­ние 12  Клет­ки и ткани нор­маль­но функ­ци­о­ни­ру­ют, если со­став и фи­зи­че­ские свой­ства внут­рен­ней среды ор­га­низ­ма че­ло­ве­ка (крови, лимфы, меж­кле­точ­ной жид­ко­сти)

 

1) по­сто­ян­но из­ме­ня­ют­ся

2) пе­ри­о­ди­че­ски из­ме­ня­ют­ся

3) имеют от­но­си­тель­ное по­сто­ян­ство

4) из­ме­ня­ют­ся в за­ви­си­мо­сти от вре­ме­ни года

Ответ: 3

9. За­да­ние 12  Из­ме­не­ние про­све­та ар­те­рий про­ис­хо­дит у че­ло­ве­ка за счёт ткани

 

1) эпи­те­ли­аль­ной

2) со­еди­ни­тель­ной

3) глад­кой мы­шеч­ной

4) по­пе­реч­но­по­ло­са­той мы­шеч­ной

Ответ: 3

10. За­да­ние 12  Воз­бу­ди­мость и про­во­ди­мость — свой­ства, ха­рак­тер­ные для ткани

 

1) нерв­ной

2) со­еди­ни­тель­ной

3) эпи­те­ли­аль­ной

4) мы­шеч­ной

Ответ: 1

11. За­да­ние 12  К жи­вот­ным тка­ням от­но­сят

 

1) со­еди­ни­тель­ную

2) ме­ха­ни­че­скую

3) про­во­дя­щую

4) об­ра­зо­ва­тель­ную

Ответ: 1

12. За­да­ние 12  Опор­ную функ­цию в ор­га­низ­ме че­ло­ве­ка вы­пол­ня­ет ткань

 

1) нерв­ная

2) со­еди­ни­тель­ная

3) эпи­те­ли­аль­ная

4) глад­кая мы­шеч­ная

Ответ: 2

13. За­да­ние 12  Ногти че­ло­ве­ка яв­ля­ют­ся про­из­вод­ны­ми

 

1) эпи­дер­ми­са

2) соб­ствен­но кожи

3) со­еди­ни­тель­ной ткани

4) под­кож­но-жи­ро­вой клет­чат­ки

Ответ: 1

14. За­да­ние 12  Му­ску­ла­ту­ра боль­шин­ства внут­рен­них ор­га­нов че­ло­ве­ка, как пра­ви­ло, об­ра­зо­ва­на

 

1) глад­кой мы­шеч­ной тка­нью

2) по­пе­реч­но­по­ло­са­той мы­шеч­ной тка­нью

3) со­еди­ни­тель­ной тка­нью

4) су­хо­жи­ли­я­ми мышц

Ответ: 1

15. За­да­ние 12  Какая ткань со­став­ля­ет у че­ло­ве­ка ос­но­ву мышц конеч­но­стей?

 

1) глад­кая мы­шеч­ная

2) по­пе­реч­но­по­ло­са­тая мы­шеч­ная

3) эпи­те­ли­аль­ная

4) со­еди­ни­тель­ная

Ответ: 2

16. За­да­ние 12  В по­пе­реч­но­по­ло­са­той мы­шеч­ной ткани, в от­ли­чие от глад­кой

 

1) клет­ки ве­ре­те­но­вид­ные

2) в клет­ках име­ет­ся одно ядро

3) клет­ки мно­го­ядер­ные

4) на­сту­па­ет мед­лен­ное утом­ле­ние

Ответ: 3

17. За­да­ние 12  К со­еди­ни­тель­ной ткани НЕ от­но­сит­ся

 

1) кост­ная

2) хря­ще­вая

3) жи­ро­вая

4) же­ле­зи­стая

Ответ: 4

18. За­да­ние 12  К эпи­те­ли­аль­ной ткани НЕ от­но­сит­ся

 

1) мер­ца­тель­ная

2) же­ле­зи­стая

3) од­но­слой­ная ку­би­че­ская

4) во­лок­ни­стая

Ответ: 4

19. За­да­ние 12  Со­еди­ни­тель­ная ткань, в от­ли­чие от дру­гих тка­ней

 

1) со­дер­жит од­но­род­ные клет­ки

2) имеет меж­кле­точ­ное ве­ще­ство

3) имеет мало меж­кле­точ­но­го ве­ще­ства

4) имеет много меж­кле­точ­но­го ве­ще­ства

Ответ: 4

20. За­да­ние 12  Сек­ре­тор­ную функ­цию вы­пол­ня­ет ткань

 

1) нерв­ная

2) мы­шеч­ная

3) со­еди­ни­тель­ная

4) эпи­те­ли­аль­ная

Ответ: 4

21. За­да­ние 12  Воз­бу­ди­мо­стью и со­кра­ти­мо­стью об­ла­да­ет ткань

 

1) со­еди­ни­тель­ная

2) эпи­те­ли­аль­ная

3) мы­шеч­ная

4) нерв­ная

Ответ: 3

22. За­да­ние 12  К со­еди­ни­тель­ной ткани не от­но­сит­ся

 

1) кровь

2) хря­ще­вая

3) кост­ная

4) мер­ца­тель­ная

Ответ: 4

23. За­да­ние 12 . К жи­вот­ным тка­ням от­но­сят

 

1) об­ра­зо­ва­тель­ную

2) про­во­дя­щую

3) эпи­те­ли­аль­ную

4) за­па­са­ю­щую

Ответ: 3

1. За­да­ние 12  К ка­ко­му клас­су от­но­сят чле­ни­сто­но­гих, тело ко­то­рых со­сто­ит из трёх от­де­лов: го­ло­вы, груди и брюш­ка

 

1) на­се­ко­мых

2) ра­ко­об­раз­ных

3) па­у­ко­об­раз­ных

4) кле­щей

Ответ: 1

2. За­да­ние 12  Какие функ­ции вы­пол­ня­ет кро­ве­нос­ная си­сте­ма на­се­ко­мых

 

1) уча­стие в га­зо­об­ме­не

2) транс­порт газов и осмо­ре­гу­ля­ция

3) уча­стие в ча­стич­ном рас­щеп­ле­нии пи­та­тель­ных ве­ществ

4) пе­ре­нос пи­та­тель­ных ве­ществ и про­дук­тов жиз­не­де­я­тель­но­сти

Ответ: 4

3. За­да­ние 12  Какой тип ро­то­во­го ап­па­ра­та ха­рак­те­рен для май­ско­го жука?

 

1) Гры­зу­щий.

2) Ко­лю­щий.

3) Ли­жу­щий.

4) Со­су­щий

Ответ: 1

4. За­да­ние 12  У на­се­ко­мых, в от­ли­чие от дру­гих бес­по­зво­ноч­ных

 

1) на го­ло­во­гру­ди че­ты­ре пары ног, брюш­ко не­чле­ни­стое

2) ко­неч­но­сти при­креп­ля­ют­ся к го­ло­во­гру­ди и брюш­ку

3) на го­ло­ве две пары вет­ви­стых уси­ков

4) тело со­сто­ит из трех от­де­лов, на груди кры­лья и три пары ног

Ответ: 4

5. За­да­ние 12  Пе­ре­ва­ри­ва­ние пищи на­чи­на­ет­ся вне пи­ще­ва­ри­тель­но­го ка­на­ла у

 

1) па­у­ков

2) на­се­ко­мых

3) ра­ко­об­раз­ных

4) мол­люс­ков

Ответ: 1

6. За­да­ние 12  Какие жи­вот­ные имеют на­руж­ный ске­лет из хи­ти­на

 

1) дву­створ­ча­тые мол­люс­ки

2) че­ре­па­хи

3) чле­ни­сто­но­гие

4) брю­хо­но­гие мол­люс­ки

Ответ: 3

7. За­да­ние 12  Пе­ре­нос­чик воз­бу­ди­те­ля эн­це­фа­ли­та

 

1) вошь

2) блоха

3) че­со­точ­ный клещ

4) та­еж­ный клещ

Ответ: 4

8. За­да­ние 12  Для ка­пуст­ной бе­лян­ки ха­рак­те­рен сле­ду­ю­щий цикл раз­ви­тия

 

1) яйцо — -> ли­чин­ка — -> ку­кол­ка — -> взрос­лое на­се­ко­мое

2) яйцо — -> ку­кол­ка — -> ли­чин­ка — -> взрос­лое на­се­ко­мое

3) взрос­лое на­се­ко­мое — -> яйцо — -> ли­чин­ка

4) взрос­лое на­се­ко­мое — -> ли­чин­ка — -> ку­кол­ка — -> яйцо

Ответ: 1

9. За­да­ние 12  Какие жи­вот­ные имеют на­руж­ный ске­лет из хи­ти­на

 

1) дву­створ­ча­тые мол­люс­ки

2) че­ре­па­хи

3) чле­ни­сто­но­гие

4) брю­хо­но­гие мол­люс­ки

Ответ: 3

10. За­да­ние 12  По­лость тела у чле­ни­сто­но­гих

 

1) пер­вич­ная

2) вто­рич­ная (целом)

3) сме­шан­ная (мик­со­цель)

4) от­сут­ству­ет

Ответ: 3

11. За­да­ние 12  Боль­ше всего ног у

 

1) реч­но­го рака

2) пчелы

3) та­ран­ту­ла

4) клопа

Ответ: 1

12. За­да­ние 12  Тра­хей нет у

 

1) пчелы

2) реч­но­го рака

3) се­но­кос­ца

4) ру­чей­ни­ка

Ответ: 2

13. За­да­ние 12  Пар­те­но­ге­не­ти­че­ское раз­мно­же­ние ха­рак­тер­но для

 

1) кошек

2) даф­ний

3) птиц

4) ля­гу­шек

Ответ: 2

14. За­да­ние 12  Сколь­ко пар хо­диль­ных ног у па­у­ко­об­раз­ных

 

1) 3

2) 4

3) 5

4) 6

Ответ: 2

15. За­да­ние 12  Жи­вот­ных от­но­сят к клас­су па­у­ко­об­раз­ных, если у них

 

1) три пары чле­ни­стых ко­неч­но­стей, три от­де­ла тела, две пары уси­ков

2) че­ты­ре пары хо­диль­ных ног, нет уси­ков

3) пять пар хо­диль­ных ног, есть го­ло­во­грудь и брюш­ко, хво­сто­вой плав­ник

4) три пары ног, есть го­ло­ва, грудь, брюш­ко из не­сколь­ких чле­ни­ков

Ответ: 2

16. За­да­ние 12  Сме­шан­ное тра­хей­но-лёгоч­ное ды­ха­ние может быть у

 

1) мол­люс­ков

2) коль­ча­тых чер­вей

3) па­у­ко­об­раз­ных

4) на­се­ко­мых

Ответ: 3

17. За­да­ние 12  Сколь­ко пар глаз у паука-кре­сто­ви­ка

 

1) одна

2) две

3) три

4) че­ты­ре

Ответ: 4

18. За­да­ние 12  Ор­га­на­ми ды­ха­ния на­се­ко­мых яв­ля­ют­ся

 

1) жабры

2) лёгкие

3) тра­хеи

4) кожа и лёгкие

Ответ: 3

19. За­да­ние 12  Сколь­ко от­де­лов тела у на­се­ко­мых

 

1) два

2) один

3) три

4) че­ты­ре

Ответ: 3

20. За­да­ние 12  Ды­халь­ца на­се­ко­мых рас­по­ло­же­ны на

 

1) го­ло­ве

2) груди

3) брюш­ке и груди

4) го­ло­ве, груди и брюш­ке

Ответ: 3

21. За­да­ние 12  Раз­мно­же­ние, каких ор­га­низ­мов ха­рак­те­ри­зу­ет­ся как по­ло­вое

 

1) пар­те­но­ге­нез у пчёл

2) поч­ко­ва­ние у дрож­жей

3) спо­ро­об­ра­зо­ва­ние у мхов

4) ре­ге­не­ра­ция у прес­но­вод­ной гидры

Ответ: 1

22. За­да­ние 12  Тра­хеи на­се­ко­мых и лёгкие пре­смы­ка­ю­щих­ся – это при­спо­соб­ле­ния на­зем­ных жи­вот­ных к

 

1) вы­ве­де­нию про­дук­тов вы­де­ле­ния

2) ды­ха­нию ат­мо­сфер­ным воз­ду­хом

3) умень­ше­нию ис­па­ре­ния

4) усво­е­нию жид­ко­сти из окру­жа­ю­щей среды

Ответ: 2

23. За­да­ние 12  Ли­жу­щий ро­то­вой ап­па­рат име­ет­ся у

 

1) май­ско­го жука

2) са­ран­чи

3) ко­ма­ра

4) ком­нат­ной мухи

Ответ: 4

24. За­да­ние 12  У на­се­ко­мых с пол­ным пре­вра­ще­ни­ем

 

1) ли­чин­ка по­хо­жа на взрос­лое на­се­ко­мое

2) за ста­ди­ей ли­чин­ки сле­ду­ет ста­дия ку­кол­ки

3) во взрос­лое на­се­ко­мое пре­вра­ща­ет­ся ли­чин­ка

4) ли­чин­ка и ку­кол­ка пи­та­ют­ся оди­на­ко­вой пищей

Ответ: 2

25. За­да­ние 12  Раз­ви­тие с пол­ным ме­та­мор­фо­зом про­те­ка­ет у

 

1) са­ран­чи

2) клопа

3) та­ра­ка­на

4) ка­пуст­ной бе­лян­ки

Ответ: 4

26. За­да­ние 12  Раз­ви­тие на­се­ко­мых с пол­ным пре­вра­ще­ни­ем поз­во­ля­ет ли­чин­ке и взрос­ло­му на­се­ко­мо­му

 

1) пе­ре­жи­вать не­бла­го­при­ят­ные усло­вия

2) раз­мно­жать­ся на раз­ных ста­ди­ях раз­ви­тия

3) рас­ши­рять ареал за счёт рас­про­стра­не­ния в ли­чи­ноч­ной форме

4) за­ни­мать раз­ные эко­ло­ги­че­ские ниши и из­бе­гать кон­ку­рен­ции в пи­та­нии

Ответ: 4

27. За­да­ние 12  Не­пол­ное пре­вра­ще­ние свой­ствен­но

 

1) ба­боч­ке Пав­ли­ний глаз

2) жуку-по­жар­ни­ку

3) стре­ко­зе-ко­ро­мыс­лу

4) мухе до­маш­ней

Ответ: 3

28. За­да­ние 12  Ку­кол­ки не бы­ва­ет у

 

1) овода ло­ша­ди­но­го

2) клопа сол­да­ти­ка

3) жука-но­со­ро­га

4) ко­ма­ра обык­но­вен­но­го

Ответ: 2

29. За­да­ние 12  К от­ря­ду дву­кры­лых от­но­сит­ся

 

1) зелёный куз­не­чик

2) ко­ло­рад­ский жук

3) ком­нат­ная муха

4) божья ко­ров­ка

Ответ: 3

30. За­да­ние 12  На­се­ко­мых, у ко­то­рых одна пара кры­льев пре­вра­ти­лась в жуж­жаль­ца от­но­сят к от­ря­ду

 

1) Ба­боч­ки

2) Дву­кры­лые

3) Пе­ре­пон­ча­то­кры­лые

4) Жест­ко­кры­лые

Ответ: 2

31. За­да­ние 12  К ка­ко­му от­ря­ду от­но­сят бе­лян­ко­во­го на­езд­ни­ка

 

1) пря­мо­кры­лых

2) дву­кры­лых

3) рав­но­кры­лых

4) пе­ре­пон­ча­то­кры­лых

Ответ: 4

32. За­да­ние 12  Об­ще­ствен­ное по­ве­де­ние свой­ствен­но

 

1) мухам

2) пчёлам

3) ко­ма­рам

4) жукам-на­воз­ни­кам

Ответ: 2

33. За­да­ние 12  Со­от­вет­ствие формы тела не­ко­то­рых на­се­ко­мых форме опы­ля­е­мых ими цвет­ков – это

 

1) ре­зуль­тат ис­кус­ствен­но­го от­бо­ра

2) ре­зуль­тат есте­ствен­но­го от­бо­ра

3) слу­чай­ность

4) при­мер мо­ди­фи­ка­ци­он­ной из­мен­чи­во­сти

Ответ: 2

34. За­да­ние 12  Пе­ре­нос­чи­ком бо­лез­ней че­ло­ве­ка может быть

 

1) ту­то­вый шел­ко­пряд

2) клоп вред­ная че­ре­паш­ка

3) комар

4) ру­чей­ник

Ответ: 3

35. За­да­ние 12  К на­се­ко­мым-вре­ди­те­лям от­но­сит­ся

 

1) на­езд­ник

2) жу­же­ли­ца

3) мед­вед­ка

4) во­до­мер­ка

Ответ: 3

36. За­да­ние 12  В био­ло­ги­че­ской борь­бе с вре­ди­те­ля­ми сель­ско­го хо­зяй­ства ис­поль­зу­ют

 

1) ро­го­хво­стов

2) слеп­ней

3) жа­ля­щих ос

4) на­езд­ни­ков

Ответ: 4

37. За­да­ние 12  У ли­чин­ки на­се­ко­мо­го от­сут­ству­ет спо­соб­ность к

 

1) ак­тив­но­му пе­ре­ме­ще­нию

2) по­ло­во­му раз­мно­же­нию

3) са­мо­сто­я­тель­но­му пи­та­нию

4) линь­ке и росту

Ответ: 2

38. За­да­ние 12  От­де­лы тела го­ло­ву, грудь и брюш­ко имеет

 

1) рак от­шель­ник

2) паук — сер­бе­рян­ка

3) скор­пи­он

4) стре­ко­за

Ответ: 4

39. За­да­ние 12  Воз­бу­ди­те­лем че­сот­ки яв­ля­ет­ся

 

1) муха

2) блоха

3) клещ

4) комар

Ответ: 3

40. За­да­ние 12  Толь­ко тра­хе­я­ми дышит

 

1) улит­ка

2) паук-кре­сто­вик

3) дож­де­вой червь

4) пчела

Ответ: 4

41. За­да­ние 12  На­руж­ный ске­лет, со­сто­я­щий из хи­ти­на, имеют:

 

1) жук-пла­ву­нец и стре­ко­за:

2) ас­ка­ри­да и ост­ри­ца;

3) боль­шой и малый пру­до­ви­ки;

4) ка­ра­си и карпы.

Ответ: 1

42. За­да­ние 12  К на­се­ко­мым с не­пол­ным пре­вра­ще­ни­ем от­но­сят­ся

 

1) жуки

2) куз­не­чи­ки

3) пчелы

4) мухи

Ответ: 2

43. За­да­ние 12 . Воз­бу­ди­тель ма­ля­рии пе­ре­но­сит­ся

 

1) кле­ща­ми

2) му­ха­ми

3) ко­ма­ра­ми

4) про­стей­ши­ми

Ответ: 3

44. За­да­ние 12 . Раз­ви­тие с не­пол­ным пре­вра­ще­ни­ем про­ис­хо­дит у

 

1) жука-но­со­ро­га

2) мухи до­маш­ней

3) пчелы ме­до­нос­ной

4) куз­не­чи­ка зе­ле­но­го

Ответ: 4

45. За­да­ние 12 . Стро­е­ние тела не чле­ни­стое у

 

 

1) со­ро­ко­нож­ки

2) реч­но­го рака

3) угря

4) дож­де­во­го червя

Ответ: 3

46. За­да­ние 12 . Чле­ни­стое стро­е­ние тела имеют

 

 

1) пчёлы

2) пла­на­рии

3) ви­но­град­ные улит­ки

4) ко­рал­лы

Ответ: 1

47. За­да­ние 12 . К клас­су Па­у­ко­об­раз­ные от­но­сит­ся

 

1) до­маш­ний клоп

2) че­со­точ­ный клещ

3) цик­лоп

4) вошь

Ответ: 2

48. За­да­ние 12 . Важ­ным си­сте­ма­ти­че­ским при­зна­ком па­у­ко­об­раз­ных слу­жит на­ли­чие

 

1) тра­хей и не­за­мкну­той кро­ве­нос­ной си­сте­мы

2) четырёх пар хо­диль­ных ног

3) трёх пар хо­диль­ных ног

4) слож­ных фа­се­точ­ных глаз

Ответ: 2

Взаимодействие человека и бычьего цепня называется симбиозом хищничеством паразитизмом протокооперацией

Оприроде московской области можно сказать то, что она действительно красива и гордо держит свою силу и мощь даже в условиях активного антропогенного воздействия. она представлена россыпью реликтовых дубрав, хвойных лесов, верховых болот, заповедных оврагов, полей, заливных лугов, глубоких озер, спокойных и вальяжных рек. и растительный и животный мир толерантно сожительствуют с человеком. природа гибко адаптировалась к его присутствию, которое со временем стает все назойливее. человек сам понимает прекрасно то, что природе нужна . именно осознание этого момента послужило причиной создания приокско-террасного биосферного заповедника (под защитой зубр, северные популяции растений) национального парка «лосиный остров», заповедно-охотничьего хозяйства завидово и еще нескольких комплексов, имеющих значение уровня федерального. (см. также  природа города москвы) растительный мир московской области основой особенностей растительности московской области является то, что она лежит на слиянии зоны леса и лесостепи. это зеленый регион – около 40% территории покрыто лесом. верхневолжская возвышенность (север области) и можайский, лотошинский, шаховский районы (запад области) – место произрастания среднетаежного хвойного леса, ельников в большинстве. мещерский лес состоит из таежного соснового массива, ольховых рощ в топких низинах. в центре и на востоке области – южнотаежные хвойно-широколиственные леса (ели, сосны, березы, осины). царица подлеска – лещина. юг области во власти широколиственного леса (дуб, липа, клен остролистный, вяз). на москворецко-окской возвышенности – переходная зона, где можно встретить большие посадки ели. долина оки укрыта сосновыми борами-степняками. крайний юг – лесостепь, причем почти вся распаханная, но липа и дуб там частые жители. если раньше во всю силу шла вырубка, то сегодня во всю силу идет лесовосстановление. на востоке есть болота (шатурский и луховицкий районы). растения аборигены уступают место приезжим, новым. много представителей в красной книге россии.

Тест по биологии 7 класс «Черви»

Тест 7 класс Тема «Черви: Плоские, Круглые, Кольчатые»

Вариант 1.

Часть А (с выбором одного правильного ответа)

1. Половое размножение у червей-паразитов со сменой хозяев происходит:

1) в организме основного хозяина; 2) в организме промежуточного хозяина; 3) в наземно-воздушной среде; 4) почве и водной среде.

2. Лучевую симметрию тела не имеет:

1) медуза – корнерот; 2) белая планария; 3) пресноводная гидра; 4) красный коралл.

3. У паразитических червей покровы тела:

1) снабжены ресничками; 2) покрыты чешуёй; 3) состоят из хитина; 4) не растворяются пищеварительными соками хозяина.

4. К какому типу относятся животные, у которых отсутствует полость тела, а промежутки между органами заполнены рыхлой соединительной тканью:

1) круглые черви; 2) кольчатые черви; 3) членистоногие; 4) плоские черви.

5. Свободноживущим видом является:

1) планария; 2) широкий лентец; 3) эхинококк; 4) кошачья двуустка.

6. Аскариды не удаляются из кишечника вместе с непереваренной пищей, так как:

1) обладают большой плодовитостью; 2) могут жить в бескислородной среде; 3) способны

перемещаться в направлении противоположном движению пищи;

4) на покровы их тела не действует пищеварительный сок.

7. Пищеварительная система аскариды человеческой в отличие от плоских червей:

1) лишена кишечника; 2) лишена ротового отверстия; 3) имеет анальное отверстие;

4) лишена анального отверстия.

8. В кожно-мускульном мешке аскариды мускулатура представлена:

1) только кольцевыми мышцами; 2) только косыми мышцами; 3) только продольными мышцами;

4) всеми перечисленными типами мышц.

9. Переваривание дождевыми червями растительных остатков способствует:

1) перемешиванию почвы; 2) проникновению в почву воздуха; 3) обогащению почвы органическими

веществами; 4) проникновению в почву влаги.

10. Животные, какого типа имеют наиболее высокий уровень организации:

1) кишечнополостные; 2) плоские черви; 3) кольчатые черви; 4) круглые черви.

Часть В

1.Установите соответствие между группами животных и характерными для них признаками:

А) Плоские черви

Б) Круглые черви

1) есть полость тела

2) нет полости тела

3) кишечник заканчивается слепо

4) кишечник заканчивается анальным отверстием

5) характерен жизненный цикл с одним хозяином

6) характерен жизненный цикл со сменой хозяев

2. Назовите червя паразита. Укажите тип и класс к которому он относится

Тест 7 класс Тема «Черви: Плоские, Круглые, Кольчатые»

Вариант 2.

Часть А (с выбором одного правильного ответа)

1. Какое животное является промежуточным хозяином печёночного сосальщика:

1) собака; 2) человек; 3) корова; 4) малый прудовик.

1. Заражение человека бычьим цепнем может произойти при:

1) употреблении в пищу мяса, которое не проверено ветеринарным врачом; 2) употреблении в пищу плохо промытых овощей, на которых находятся яйца паразита; 3) купании в стоячем водоёме, в воде которого обитают личинки паразита; 4) использовании плохо вымытой посуды, из которой ел человек, заражённый паразитом.

3. Взаимодействие человека и бычьего цепня называется:

1. симбиозом; 2) хищничеством; 3) паразитизмом; 4) протокооперацией.

4. Стенка тела плоских червей представлена:

1) только кожей; 2) наружным хитиновым скелетом; 3) раковиной; 4) кожно-мускульным мешком.

5. Внутренние органы белой планарии помещаются:

1) в первичной полости тела; 2) во вторичной полости тела; 3) в рыхлой соединительной ткани; 4) в кишечной полости.

6. Многоклеточных двустороннесимметричных животных удлинённой формы, не разделённых на членики, имеющих полость тела, относят к типу:

1) плоские черви; 2) круглые черви; 3) кишечнополостные; 4) кольчатые черви.

7. Заражение человеческой аскаридой происходит при:

1) поедании сырого мяса; 2) поедании сырой рыбы; 3) несоблюдении норм личной гигиены;

4) заражении ран и порезов.

8. При переходе от плоских к круглым червям произошли следующие ароморфозы (усложнения):

1) появилась полость тела; 2) появилась кровеносная система; 3) появились органы дыхания;

4) появились специализированные органы движения.

9. В отличие от плоских и круглых червей у кольчатых червей имеется:

1) нервная система; 2) кровеносная система; 3) выделительная система; 4) пищеварительная система.

10. Выделительная система кольчатых червей представлена:

1) выделительными железами; 2) парными почками в каждом сегменте тела; 3) парными

выделительными воронками в каждом сегменте тела; 4) в каждом сегменте тела кожными железами.

Часть В Выберите три правильных утверждения из шести.

1.К признакам кольчатых червей относят:

1) окологлоточное нервное кольцо и отходящие от него нервные стволы с ответвлениями

2) щетинки на члениках тела

3) окологлоточное нервное кольцо и брюшная нервная цепочка

4) слабое развитие или отсутствие органов чувств

5) наличие замкнутой кровеносной системы

6) питание тканями органов тела человека

2. Назовите червя паразита. Укажите тип и класс к которому он относится

Тест 7 класс Тема «Черви: Плоские, Круглые, Кольчатые»

Вариант 3.

Часть А (с выбором одного правильного ответа)

1. Дыхание планарии происходит:

1) диффузно через покровы тела; 2) с помощью наружных выростов – жабр; 3) с помощью внутренних жабр; 4) с помощью лёгочных мешков.

2. Основным хозяином бычьего цепня является:

1) бык; 2) человек; 3) овца; 4) лошадь.

3. Промежуточным хозяином печёночного сосальщика является:

1) бык; 2) человек; 3) рыба; 4) моллюск прудовик.

4. Кого относят к ресничным червям:

1) бычьего цепня; 2) свиного цепня; 3) эхинококка; 4) молочно-белую планарию.

5. У паразитических червей в процессе эволюции:

1) появились глаза; 2) возник гермафродитизм; 3) редуцировалось анальное отверстие; 4) возникли органы прикрепления к организму хозяина.

6. У круглых червей в отличие от плоских полость тела заполнена:

1) кровью; 2) воздухом; 3) жидкостью; 4) паренхимой (соединительной тканью).

7. Острицы паразитируют в:

1) желудке; 2) тонком кишечнике; 3) печени; 4) толстом кишечнике.

8. Какие группы животных не используют в процессе дыхания кислород:

1) дождевые черви и другие обитатели почвы; 2) личинки насекомых, обитающих под

корой деревьев; 3) аскарида и другие черви-паразиты; 4) скаты и другие обитатели

морских глубин.

9. Нервная система дождевого червя представлена:

1) разбросанными по всему телу нервными клетками; 2) окологлоточным нервным

кольцом и брюшной нервной цепочкой; 3) головными нервными узлами и отходящими

от них стволами; 4) окологлоточным нервным кольцом, спинным и брюшным

стволами.

10. Дождевые черви, прокладывая в почве ходы:

1) способствуют образованию в растениях органических веществ; 2) улучшают условия

дыхания корней; 3) влияют на скорость передвижения в растениях минеральных

веществ; 4) влияют на скорость передвижения в растениях органических веществ.

Часть В

1.Установите соответствие между признаком и типом живых организмов:

А) Кишечнополостные

Б) Кольчатые черви

1) двухслойные животные

2) наличие полости тела, заполненной жидкостью

3) сетчатая нервная система (диффузный тип)

4) туловище сегментировано

5) лучевая симметрия

6) наличие кровеносной системы

2. Назовите червя. Укажите тип и класс к которому он относится.

Тест 7 класс Тема «Черви: Плоские, Круглые, Кольчатые»

Вариант 4.

Часть А (с выбором одного правильного ответа)

1. Нервная система плоских червей:

1) диффузного типа; 2) лестничного типа; 3) трубчатого типа; 4) отсутствует.

2. Финна (личинка) бычьего цепня обычно развивается:

1) во внешней среде; 2) в мышцах и внутренних органах человека; 3) в мышцах и внутренних органах коровы; 4) в мышцах и внутренних органах собаки.

3. Населяет тонкий кишечник, не имеет развитой пищеварительной системы:

1) белая планария; 2) бычий цепень; 3) печёночный сосальщик; 4) кошачья двуустка.

4. В цикле развития плоских червей наблюдается смена хозяев. Где происходит цикл развития печёночного сосальщика:

1) в организмах малого прудовика и крупного рогатого скота; 2) в организмах крупного рогатого скота и человека; 3) в организмах сельскохозяйственных животных и собаки; 4) все ответы ошибочны.

5. Какое из перечисленных животных не имеет анального отверстия:

1) аскарида; 2) острица; 3) белая планария; 4) дождевой червь.

6. У круглых червей отсутствует:

1) полость тела; 2) выделительная система; 3) нервная система; 4) кровеносная система.

7. Тело разделено на членики у:

1) кишечнополостных; 2) губок; 3) круглых червей; 4) кольчатых червей.

8. Какое из перечисленных животных имеет круглое в сечении тело:

1) аскарида человеческая; 2) печёночный сосальщик; 3) бычий цепень; 4) сибирская двуустка.

9. У кольчатых червей мускулатура:

1) кольцевая и продольная; 2) только кольцевая; 3) только продольная; 4) поперечная, продольная и

кольцевая.

10. Кольчатые черви отличаются от круглых:

1) двусторонней симметрией; 2) сквозным кишечником; 3) наличием полости тела; 4) наличием

кровеносной системы.

Часть В

1.Установите соответствие между мерой профилактики заражения человека и паразитом, его вызывающим:

А) аскарида

Б) бычий цепень

1) не есть сырого плохо проваренного или прожаренного мяса

2) мыть руки перед едой и после еды

3) не есть немытые сырые фрукты и овощи

4) защищать продукты питания от мух

2. Назовите червя. Укажите тип и класс к которому он относится

Ответы: Тема: «Черви: Плоские, Круглые, Кольчатые»

Вариант: 1

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)	х				х						А: 236 Б: 146
2)		х
3)						х	х	х	х	х
4)			х	х

Вариант: 2

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)		х						х			235
2)						х			х
3)			х		х		х			х
4)	х			х

Вариант: 3

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)	х										А: 135 Б: 246
2)		х							х	х
3)						х		х
4)			х	х	х		х

Вариант: 4

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)				х				х	х		А: 234 Б: 12
2)	х		х
3)		х			х
4)						х	х			х

Фамилия, имя:

Класс:

Вариант:

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)
2)
3)
4)

Фамилия, имя:

Класс:

Вариант:

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)
2)
3)
4)

Фамилия, имя:

Класс:

Вариант:

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)
2)
3)
4)

Фамилия, имя:

Класс:

Вариант:

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)
2)
3)
4)

Фамилия, имя:

Класс:

Вариант:

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)
2)
3)
4)

Фамилия, имя:

Класс:

Вариант:

	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10	Часть В
1)
2)
3)
4)

тест Плоские черви — Биология

ПЛОСКИЕ ЧЕРВИ

А1. Половое размножение у червей-паразитов со сменой хозяев происходит

1. в организме основного хозяина 2)в организме промежуточного хозяина

1. в наземно-воздушной среде 4)почве и водной среде

А2. Какое животное является промежуточным хозяином печёночного сосальщика

1. собака 2)человек 3)корова 4)малый прудовик

А3. Лучевую симметрию тела не имеет

1. медуза-корнерот 2)белая планария

3)пресноводная гидра 4)красный коралл

А4. Заражение человека бычьим цепнем может произойти при

1. употреблении в пищу мяса, которое не проверено ветеринарным врачом

2. употреблении в пищу плохо промытых овощей, на которых находятся яйца паразита

3. купании в стоячем водоёме, в воде которого обитают личинки паразита

4. использовании плохо вымытой посуды, из которой ел человек, заражённый паразитом

А5. У паразитических червей покровы тела

1. снабжены ресничками 2) покрыты чешуёй

3) состоят из хитина 4)не растворяются пищеварительными соками

А6. Взаимодействие человека и бычьего цепня называется

1. симбиозом 2)хищничеством 3)паразитизмом 4)протокооперацией

А7. К какому типу относятся животные, у которых отсутствует полость тела, а промежутки между органами заполнены рыхлой соединительной тканью

1. круглые черви 2)кольчатые черви

3) членистоногие 4)плоские черви

А8. Стенка тела плоских червей представлена

1. только кожей 2) наружным хитиновым скелетом

3) раковиной 4) кожно-мускульным мешком

А9. Свободноживущим видом является

1. планария 2) широкий лентец 3)эхинококк 4) двуустка

А10. Внутренние органы белой планарии помещаются

1. в первичной полости тела

2. во вторичной полости тела

3. в рыхлой паренхиме

4. в кишечной полости

А11. Дыхание планарии происходит

1. диффузно через покровы тела

2. с помощью наружных выростов – жабр

3. с помощью внутренних жабр

4. с помощью лёгочных мешков

А12. Нервная система плоских червей

1. диффузного типа

2. лестничного типа

3. трубчатого типа

4. отсутствует

А13. Основным хозяином бычьего цепня является

1. бык 2) человек 3) овца 4) лошадь

А14. Финна бычьего цепня обычно развивается

1. во внешней среде

2. в мышцах и внутренних органах человека

3. в мышцах и внутренних органах коровы

4. в мышцах и внутренних органах собаки

А15. Промежуточным хозяином печёночного сосальщика является

1. бык

2. человек

3. рыба

4. моллюск прудовик

А16. Финны эхинококка образуются

1. в головном мозге

2. в лёгких

3. в печени

4. во всех перечисленных органах

А17. Населяет тонкий кишечник, не имеет развитой пищеварительной системы

1. белая планария

2. бычий цепень

3. печёночный сосальщик

4. кошачья двуустка

А18. В цикле развития плоских червей наблюдается смена хозяев? Где происходит цикл развития печёночного сосальщика

1. в организмах малого прудовика и крупного рогатого скота

2. в организмах крупного рогатого скота и человека

3. в организмах сельскохозяйственных животных и собаки

4. все ответы ошибочны

А19. Кого относят к ресничным червям

1. бычьего цепня

2. свиного цепня

3. эхинококка

4. молочно-белую планарию

А20. Личинка широкого лентеца развивается в теле

1. собаки

2. человека

3. малого прудовика

4. циклопа и рыбы

А21. У паразитических червей в процессе эволюции

1. появились глаза

2. возник гермафродитизм

3. редуцировалось анальное отверстие

4. возникли органы прикрепления к организму хозяина

А22. Какое из перечисленных животных не имеет анального отверстия

1. аскарида

2. ланцетник

3. белая планария

4. дождевой червь

А23. Наиболее сильной редукции системы органов подверглись у

1. нереиды

2. бычьего цепня

3. острицы

4. платяной вши

В1.Выберите три верных ответа из шести. К ленточным червям относятся

А) эхинококк

Б) свиной цепень

В) широкий лентец

Г) кошачья двуустка

Д) печёночный сосальщик

Е) молочно-белая планария

С1. Дайте краткий ответ на вопрос. Как человек может заразиться печёночным сосальщиком?

С2. Найдите ошибки в приведённом тексте. Укажите номера предложений, в которых сделаны ошибки, исправьте их.

1. Все представители типа Плоские черви ведут паразитический образ жизни.

2. Бычьего цепня относят к ленточным червям.

3. Тело бычьего цепня имеет членистое строение.

4. У бычьего цепня хорошо развита пищеварительная система и он активно питается.

5. Основным хозяином бычьего цепня является крупный рогатый скот.

С3. Найдите ошибки в приведённом тексте. Укажите номера предложений, в которых сделаны ошибки, исправьте их.

1. Плоские черви – это трёхслойные животные.

2. К типу Плоские черви относят белую планарию, человеческую аскариду и печёночного сосальщика.

3. Плоские черви имеют вытянутое уплощенное тело.

4. У них хорошо развита нервная система.

5. Плоские черви – раздельнополые животные, откладывают яйца.

С4. Дайте полный развёрнутый ответ на вопрос. Докажите на примере паразитических ленточных червей, что общая дегенерация является одним из способов достижения биологического прогресса.

Сравнительная геномика показывает адаптивную эволюцию азиатского ленточного червя при переходе к новому промежуточному хозяину

Особенности генома и сравнение

Мы секвенировали геномы T. saginata и T. asiatica , полученные от одиночных взрослых червей, с примерно 95-кратным охватом используя платформу Illumina, и собрали их в 3626 (N50 = 583 кб, общий размер = 169,1 Мб) и 6 904 (N50 = 342 кб, размер = 168,0 Мб) каркасов с длиной> 0,5 кб, соответственно. (Примечание: для наглядности параметры будут описаны в порядке T.saginata и T. asiatica , если это уместно в дальнейшем.) Эскизные сборки крупнее, чем у T. solium (122,3 Мб) ¹³ . Оба генома имеют идентичное 42,3% содержание GC, подобное таковым у T. solium , Echinococcus multilocularis и E. granulosus (41,9–43,5%) ^13,14 , но выше, чем у Schistosoma spp. ¹⁵ и Caenorhabditis spp. (34,1–37,9%; таблица 1; дополнительная таблица 1).Полнота двух секвенированных геномов схожа, 89,52% и 90,32% соответственно, по оценке с использованием подхода картирования основных эукариотических генов ¹⁶ , что сопоставимо с таковыми для двух хорошо собранных геномов Echinococcus (89.11– 92,74%; дополнительный рис.1). Два генома ленточных червей содержат 10,38 и 10,90% повторяющихся последовательностей, подобных другим ленточным червям, но ниже, чем у сосальщиков, и все основные некодирующие виды РНК, включая гены консервативной микроРНК и транспортной РНК (таблица 1; дополнительные таблицы 2 и 3).

Таблица 1 Геномные особенности T. saginata и T. asiatica в сравнении с другими червями.

Мы предсказали 13 161 и 13 323 генов, кодирующих белок в двух геномах, 77,2 и 75,7% из которых были подтверждены секвенированием РНК (RNA-seq; Дополнительные методы). Более половины этих генов можно было сопоставить с терминами генной онтологии (GO) (1472 и 1461 термина), идентификаторами KO в базе данных Киотской энциклопедии генов (3039 и 3033) и доменами Pfam (3,123 и 3111).Среди предсказанных белков 2361 (17,93%) и 2365 (17,75%) содержали трансмембранные (TM) домены, а 1094 (8,21%) и 1048 (7,87%) — последовательности сигнального пептида. Эти гены представляют собой метаболические пути, которые практически идентичны таковым у других ленточных червей, включая потерю способности de novo синтезировать определенные питательные вещества, такие как большинство аминокислот, стероидных гормонов и липидов ^13,14 (дополнительный рис. 2).

Интроны присутствуют в 81.0 и 80.9% генов двух ленточных червей. Длина коротких интронов соответствует бимодальному паттерну распределения с двумя основными пиками на ~ 36 п.н. (интроны пик-1) и ~ 73 п.н. (пик-2; рис. 1а). Эта особенность также наблюдалась у других ленточных червей ¹³ и моногенеев Gyrodactylus salaris ¹⁷ , но не у сосальщиков и Schmidtea mediterranea (только пик-1), что позволяет предположить наличие этой особенности до разрастания цестод. (или до расхождения паразитических плоских червей, но потерянных в линии трематод).Эти интроны пика-1 и 2 расположены преимущественно в 3′-концевой и средней областях генов соответственно (рис. 1b). Гены, содержащие интроны пика-2, как правило, содержат больше интронов, чем гены, содержащие интроны пика-1 (например, в среднем 10,52 и 14,80 интронов на ген в последовательностях, содержащих интроны пика 1 и 2 в T. saginata ( P < 0,01 по двустороннему критерию суммы рангов Вилкоксона) (дополнительный рисунок 3). Интересно, что гены, содержащие интрон пика 2, значительно обогащены определенными функциональными группами (например, активностью пирофосфатазы, активностью гидролазы и связыванием нуклеозидов) и клеточными компонентами (например, моторные белки цитоскелета и мембранные белки; рис.1c; Дополнительные данные 1). Поразительная, но ранее не описанная особенность ленточных червей — очевидное предпочтение средней длины соседних интронов, фланкирующих небольшие экзоны. Минимальная средняя длина интронов, фланкирующих небольшие экзоны (<400 п.н.), составляет 502 и 370 п.н. у T. saginata и T. asiatica соответственно. Эта особенность встречается и у некоторых других видов беспозвоночных, например, S. mansoni , Caenorhabditis elegans и Drosophila melanogaster (рис.1d; Дополнительные рисунки 4 и 5). Однако масштабы этой особенности среди эукариот и механизм, лежащий в основе этого, еще предстоит выяснить. Интроны у ленточных червей смещены в сторону оснований A / T (26,8 / 31,1% у T. saginata ; 26,6 / 31,1% у T. asiatica ), но не так очевидно, как у S. mansoni (31,3 / 33,6%). ) и G. salaris (33,8 / 35,3%; дополнительный рис.6). Однако A / T-смещение в экзонах не наблюдалось у ленточных червей, хотя оно было обнаружено у сосальщиков (то есть 25.2 / 25,0% у T. saginata и 25,3 / 25,1% у T. asiatica по сравнению с 31,5 / 33,2% у S. mansoni ; Дополнительный рис.7).

Рисунок 1: Уникальные особенности интронов в геномах ленточных червей.

( a ) Бимодальное распределение длин коротких интронов у ленточных червей ( T. asiatica , T. saginata, T. solium и E. multilocularis ) и моногенеев G. salaris по сравнению с унимодальными. распределения в Fluke S.mansoni и свободноживущий плоский червь S. mediterranea . ( b ) Предпочтительное распределение интронов пика-1 и пика-2 в направлении 3′-концевых и средних участков генов соответственно. Кривые показывают взаимосвязь между плотностями интронов и относительными положениями 5′-концов генов. ( c ) Гены, содержащие интрон пика-2, сильно обогащены определенными функциональными группами (показано для T. asiatica двусторонним точным тестом Фишера). ( d ) Предпочтение длины интронов, фланкирующих небольшие экзоны (<400 п.н.; показано для T.asiatica ). Минимальная средняя длина (5 ‘или 3’) интронов, фланкирующих небольшие экзоны, которые имеют определенную длину (<400 п.н.), составляет 370 п.н. у T. asiatica .

Мы сравнили гомологичные гены среди человеческих ленточных червей и обнаружили, что 12 984 (97,5%) и 11 888 генов T. asiatica (90,3%) имели гомологи в T. saginata и T. solium (отсечение BLASTP: 1 ). e ⁻⁴ ; рис. 2а). Парный анализ коллинеарности ортологичных блоков на каркасах выявил более высокую степень сходства между T.saginata и T. asiatica ( n ₁ = 7 201, n ₂ = 7212 292 блока), чем между двумя видами и T. solium ( n ₁ = 6,055 , n ₂ = 6058303 блока; рис. 2б). Аналогичным образом, более высокая идентичность нуклеотидов (92,26%) с более крупными выравниваемыми блоками (всего 138 МБ, средняя длина = 5,4 т.п.н.) наблюдалась между T. saginata и T. asiatica (по сравнению с примерно 88,53% идентичности, всего примерно 108 МБ и 3.Средняя длина между говяжьим / азиатским и свиным ленточными червями составляет 8 kb). Эти данные согласуются с их таксономической принадлежностью.

Рисунок 2: Гомологи и синтения между T. asiatica и родственными ленточными червями.

( a ) Гомологичные гены, общие между T. asiatica и другими ленточными червями (то есть T. saginata , T. solium , E. multicularis и H. microstoma ). ( b ) Связи генного блока между T.asiatica и T. saginata . Коллинеарные блоки генов, определенные с помощью MCScan между каркасами генома (> 1 Mb), представляют 7212 и 7 201 ген для T. asiatica и T. saginata , соответственно.

Дупликации генов во время дивергенции ленточных червей

Дупликация генов (GD) известна как основной источник материалов для эволюционных инноваций и адаптаций ^18,19 , в которых возраст события GD пропорционален количеству синонимичных замен на синонимичный сайт ( K _s ) паралоговых генов.В геномах T. saginata , T. asiatica и других родственных паразитических плоских червей распределения K _s обычно имеют квазиэкспоненциальную L-образную форму (рис. 3a, b; дополнительный рис. 8), что хорошо согласуется с представлениями о том, что большинство дупликаций являются молодыми (например, 4,36 и 4,98% GD с K _s <0,01 в геномах T. saginata и T. asiatica ) из-за постоянной потери дублированных гены с течением времени.Эти события в основном связаны с мелкомасштабными дупликациями генов (SSGD), в которых преобладают рассредоточенные дупликации (например, 71,95% у T. saginata , 74,14% у T. asiatica и 69,94% у E. multilocularis ). с последующими тандемными (16,69, 15,69 и 15,08%) и проксимальными дупликациями (10,75, 8,90 и 11,29%; дополнительная таблица 4) в текущих сборках.

Рисунок 3: Дупликации генов, выявленные с помощью анализа K _s .

( a ) Процент паралоговых пар генов дублированных генов вместе с K _{s Значения} обычно имеют L-образную форму в T.saginata (Tsa) и T. asiatica (Tas), что указывает на возникновение событий непрерывной дупликации генов и потерю дублированных генов с течением времени. ( b ) Распределение значений K _s в ортологичных генах с пиками, указывающими на расщепления между различными плоскими червями T. asiatica (Tas), T. saginata (Tsa), T. solium (Tso ), E. granulosus (Egr), E. multilocularis (Emu), S.mansoni (Sma) и S. japanicum (Sja). Серая полоса указывает на точку расхождения между линиями Taenia и Echinococcus . ( c ) Обширные дупликации генов диагностического антигена gp50 в линии ленточных червей ( Taenia , Echinococcus и Hymenolepis ). ( d ) Логотип последовательности показывает консервативные и отличные характеристики последовательностей gp50 от ленточных червей. Логотип последовательности был создан из 183 последовательностей, выровненных по консервативным блокам, выбранным Gblocks с менее строгим отбором (http: // molevol.cmima.csic.es/castresana/Gblocks_server.html).

Хотя ретротранспозоны являются основными элементами, подверженными GD в геномах T. saginata и T. asiatica , несколько функциональных гомологичных групп (включая поверхностные антигены, HSP70, убиквитин-конъюгированный фермент, рианодиновый рецептор 44f, циклин-зависимую киназу, пуромицин-чувствительная аминопептидаза и белки цинковых пальцев), по-видимому, также испытали постоянные и обширные SSGD в течение истории эволюции линии ленточных червей (рис. 3c; Дополнительные рисунки 9 и 10; Дополнительная таблица 5). Эти события SSGD привели к тому, что многие сверхпредставленные суперсемейства с высоким разнообразием последовательностей сопровождали диверсификацию их биологических функций. Среди них частые дупликации и удержания специфических для ленточных червей поверхностных антигенов (например, антигенов Taeniidae и диагностического антигена gp50) указывают на их важность для выживания паразитов и / или адаптации к новым условиям. Действительно, известно, что антигены Taeniidae играют важную роль в уклонении от иммунитета хозяина ²⁰ , тогда как белки диагностического антигена gp50 представляют собой заякоренные гликозилфосфатидилинозитолом мембранные гликопротеины, также активно участвующие во взаимодействии с иммунной системой хозяина ²¹ .Семейство генов gp50, по-видимому, дуплицировалось более широко, в основном за счет дублирующих транспозиций и тандемных дупликаций вдоль Taeniidae и Taenia -специфической истории эволюции (рис. 3c). Эти дублированные гены по-разному сохраняются у разных ленточных червей и, возможно, выполняют множество функций посредством нео- / субфункционализации с сильно расходящимися последовательностями (рис. 3d), хотя их точные биологические роли еще предстоит проиллюстрировать.

Как основная сила в эволюции, видоспецифичные GD могут вести к дифференциации функций генов, тем самым облегчая видоспецифичную адаптацию и дивергенцию ¹⁸ .Геномы T. saginata и T. asiatica обладают большим количеством недавно дублированных генов (включая 866 ​​и 1075 внутрипаралогов после их дивергенции, соответственно), которые были получены из 481 и 614 повторяющихся событий по каждой линии, соответственно. Дублирующиеся гены, по-видимому, возникают с высокой средней скоростью в их геномах (0,0321 и 0,0404 дубликатов на ген на миллион для T. saginata и T. asiatica соответственно), аналогично оценкам в E.multilocularis (0,0304) и C. elegans (0,0208) ²² , что свидетельствует о вероятной высокой степени пластичности их геномов (Дополнительные методы, раздел 8. 9). Видоспецифичные GD были также показаны с помощью анализа обогащения генов, в котором дифференциальные распределения значительно обогащенных категорий генов в биологических процессах ( P <0,05 по двустороннему точному критерию Фишера) наблюдались между T. asiatica (в основном с высоким содержанием сборка нуклеосом, движение ресничек и локализация рибосом) и T.saginata (в основном обогащенный гликозилированием белка; дополнительная таблица 6), что свидетельствует о неслучайных процессах удержания генов в каждом геноме. Эти наблюдения предполагают, что высокая скорость происхождения GD и преимущественное сохранение семейств дублированных генов, возможно, способствовали, по крайней мере частично, дивергенции двух тесно связанных ленточных червей.

Дублированные гены в процессе приобретения новых функций во время разделения видов, вероятно, будут способствовать дифференциации видов ¹⁹ .Используя внепаралогичные гены из T. solium в качестве внешних групп, мы сравнили скорость эволюции каждой пары внепаралоговых генов, возникающих после дивергенции T. saginata и T. asiatica , и идентифицировали ряд недавно дублированные гены, которые эволюционировали значительно асимметрично между паралогическими парами (88/592 у T. saginata , 72/804 у T. asiatica ; P <0,05 по тесту относительной скорости Таджимы), что означает, что они были склонны к расхождению функции.В частности, компоненты цитоскелета (например, актин, тяжелая цепь динеина и кинезин), поверхностные антигены тегумента (например, EG95 и gp50), переносчики / каналы ионов (например, рецепторы рианодина 44f, семейство носителей растворенного вещества 12 и белок множественной лекарственной устойчивости ) и белки, связанные с ростом / развитием (например, рецептор 4 фактора роста фибробластов, основной белок круглой сперматиды 1 и белок полярности сегментов), по-видимому, еще не достигают стабильной скорости у T. asiatica (дополнительные данные 2).Эти белки, вероятно, важны для видообразования T. asiatica , учитывая их роль в поддержании тегумента, регуляции гомеостаза и росте / воспроизводстве. Семейство генов галактозилтрансфераз может играть особенно важную, но еще не определенную биологическую роль в T. saginata из-за его непрерывных дупликаций в процессе эволюции ленточных червей. Кроме того, эволюционное расхождение недавно дублированных пар генов подтверждается расхождениями в паттернах их экспрессии ( R ² = 0.2462 в T. saginata ; 0,0114 у T. asiatica ) (дополнительный рис. 11) и структуры генов (что составляет 23,82 и 15,05% паралогичных пар у T. saginata и T. asiatica ), что указывает на их возможные функциональные расхождения.

История видообразования и ускоренная эволюция у

T. asiatica

Мы собрали 102 однокопийных гена, консервативных у 10 плоских червей и родственных им видов, для оценки дат дивергенции ленточных червей с использованием байесовского подхода с расслабленными часами ²³ .Анализ на основе генома показал, что в период раннего плейстоцена (дополнительный рис. 12) произошло расхождение между говяжьим и азиатским ленточными червями на отметке 1,142 млн лет (0,55–1,43, максимальная плотность вероятности 95%) (дополнительный рисунок 12), что близко к ранее оцененной дате (~ 1,0 млн лет назад). ) на основе митохондриальных генов ^11,12 . Этот раскол предшествовал одомашниванию свиней и крупного рогатого скота (~ 10 000 лет назад) ²⁴ и миграции из Африки Homo sapiens (~ 100 000 лет назад) ²⁵ , но попал в периоды роста популяции и миграции. из H.erectus из Африки в Азию (от ∼1,8 до 0,4 млн лет назад) ²⁶ . В настоящее время ближайшие родственники T. saginata и T. asiatica (например, T. simbae ) встречаются только в Африке или прилегающих регионах ^10,11 . Если предположить теорию «минимального числа смен хозяев», то наш вывод согласуется с более ранним предположением ^9,10,11 о том, что общий предок говяжьих и азиатских ленточных червей ( T. saginata, подобных ) впервые колонизировал людей в период или раньше. ранний плейстоцен, а предок гоминидов г.erectus приобрел этого ленточного червя от крупного рогатого скота в Африке, а затем передал его свиньям в Азии. Мы также предполагаем, что постоянная охотничья деятельность H. erectus позволила длительные и последовательные взаимодействия между тремя видами хозяев, таким образом опосредовав передачу T. saginata -подобного предка от быков к самкам, в результате чего произошло T. asiatica . .

Несмотря на высокое молекулярное и морфологическое сходство азиатских и мясных ленточных червей, скорость нуклеотидных замен (длина ответвления) в генах, кодирующих белок, составляет T.asiatica (0,00467 мутации на сайт) в 1,27 раза выше, чем у T. saginata (0,00379 мутации на сайт) (дополнительный рис. 13; тест относительной скорости Таджимы, P <0,01). Кроме того, частота нуклеотидных мутаций в геноме T. asiatica составляет 4,09 × 10 ⁻⁹ (3,27–8,52 × 10 ⁻⁹ ) мутаций на сайт в год (по сравнению с ∼3,32 × 10 ⁻⁹ ). у T. saginata и ∼2,82 × 10 ⁻⁹ у T. solium ), что примерно в 10 раз выше, чем у человека (0.33–0,47 × 10 ⁻⁹ ) ²⁷ . Более высокая частота мутаций обеспечивала большую вариабельность генома для отбора и адаптации, необходимых для дивергенции / видообразования T. asiatica от T. saginata . Однако механизм, приводящий к ускоренной эволюции генома T. asiatica , неясен.

Сопоставляя полезные считывания последовательностей библиотек с короткими парными концами с собранными геномами, мы обнаружили значительное количество гетерозиготных однонуклеотидных вариаций (SNV).Общий показатель SNV у T. asiatica в 2,97 раза выше, чем у T. saginata (дополнительная таблица 7). Геномы T. asiatica и T. saginata содержали 60 734 (362 сайта на мегабайт) и 20 700 (122 сайта на мегабайт) высококачественных гетерозиготных SNV соответственно. Из них 6,90% ( T. asiatica ) и 5,96% ( T. saginata ) были локализованы в генах, кодирующих белок, из которых наиболее значительно обогащенные гены были переносчиками в T. asiatica , в том числе для ионов ( n = 32), органических анионов ( n = 11), аминокислот ( n = 5) и сульфатов ( n = 2; дополнительные данные 3). Эти белки в основном участвуют в поддержании клеточного гомеостаза и абсорбции питательных веществ (дополнительный рис. 14). Кроме того, в геноме T. asiatica (2359 инделей) мы наблюдали больше мелких инделей (размер = 1–5 п.н.), чем в T. saginata (1014 инделей; дополнительная таблица 7). Как естественные мутации с течением времени, так и генетические обмены между людьми могут способствовать гетерозиготности, но их индивидуальный вклад в T.asiatica не удалось установить здесь из-за отсутствия данных о внутривидовом генетическом разнообразии.

Геном T. asiatica также подвергся большему увеличению семейств генов ( n = 231) и расширению ( n = 408), чем T. saginata ( n = 182 и 308; рис. 4a) . Полученные семейства генов — это в основном новые домены с неизвестными функциями, возможно, связанные с определенными специализированными адаптациями, тогда как вариации числа копий генов связаны с функциональным расширением. Интересно, что значительное расширение (специфичные для ветви значения P <0,05) генов рецепторов липопротеинов низкой плотности (LDLR) и десатуразы жирных кислот (FADS) были замечены у T. asiatica ( n = 9 и 4 против ). n = 7 и 1 из T. saginata или T. solium ; рис. 4б, в). Мы предполагаем, что это расширение сыграло важную роль в переключении промежуточного хозяина с крупного рогатого скота на свиней, способствуя укоренению цистериков азиатского ленточного червя в богатой липидами печени.

Рисунок 4: Эволюция семейств генов у плоских и круглых червей.

( a ) Динамика размеров семейств генов в геномах T. saginata , T. asiatica , T. solium , E. granulosus , E. multilocularis , H. microstoma , S. japonicum и S. mansoni . Цифры над и под ветвями указывают прирост / потерю семейства генов (красный) и расширение / сокращение (синий), соответственно.( b ) Филогенетическая реконструкция сгруппировала гены рецепторов липопротеинов низкой плотности (LDLR) из T. saginata , T. asiatica и T. solium на четыре группы, в которых гены LDLR группы 4 были расширены только в геном T. asiatica (Дополнительные методы, раздел 8.8). ( c ) Увеличение количества десатураз жирных кислот (FADS) в геноме T. asiatica по сравнению с геномом T. saginata (Дополнительные методы, раздел 8.8).

Адаптивный отбор в геноме

T. asiatica

Положительный отбор является важным источником эволюционных инноваций и одной из основных движущих сил, способствующих дивергенции видов. Чтобы оценить роль положительного отбора в эволюции T. asiatica , мы выбрали 1: 1 ортологичные гены шести ленточных червей для анализа модели сайтов ветвления с помощью филогенетического анализа по максимальному правдоподобию (PAML) ²⁸ и идентифицировали 134 и 102 положительно отобранных гена (PSG) в T.asiatica и T. saginata (тест отношения правдоподобия, P <0,05; дополнительные данные 4). Мы проанализировали PSG в T. asiatica , чтобы проверить, были ли эти быстро эволюционирующие гены обогащены специфическими функциями после расхождения с T. saginata . Мы наблюдали эволюционное давление на некоторые важные гены в клеточных процессах, включая те, которые участвуют в транскрипции, трансляции и регуляции деградации белков (например, различные рибосомные белки, тРНК-гуанин-N7-метилтрансфераза, бифункциональная аминоацил-тРНК-синтетаза, компонент 20 процессома малой субъединицы, факторы транскрипции и белки, связанные с убиквитинированием; дополнительные данные 4).

Сигналы адаптивного отбора также наблюдались в некоторых генах, связанных со специализированной средой выживания для T. asiatica , но не для T. saginata . Например, отбор был обнаружен в генах, участвующих в поддержании pH и ионном гомеостазе (например, карбоангидраза, ионотропный каинит рецептора глутамата и чувствительный к амилориду катионный канал 4), что подразумевает адаптацию к новой внутренней среде хозяина. В дополнение к генам LDLR и FADS мы наблюдали PSG, участвующие в очистке липидов (например, белок Niemann Pick C1, связывающий жирные кислоты белок и белок-переносчик гликолипидов) и гликолиз (например, пируваткиназа и фруктоза-2). , 6-бисфосфатаза), которые, вероятно, были полезны для T.asiatica в установлении инфекции в печени свиней, богатой липидами / сахаром. Тегумент необходим для защиты паразитических плоских червей от атак со стороны систем защиты хозяина ^29,30,31 . Мы наблюдали сильные сигналы отбора в генах, ответственных за поддержание целостности поверхности тела азиатского ленточного червя, включая белки, связанные с цитоскелетом ^32,33 (например, белок миотубуларин, тяжелую цепь миозина, тяжелую и легкую цепи динеина, белки, связанные с кинезином, внутрифлагеллярные белки). транспортный белок, кальпонин, катанин и 4.1, эзрин, радиксин, белок, содержащий домен моэзина (FERM)), клеточная адгезия / соединение (например, белок плотных контактов, белок β-катенин, протокадгерин гамма и связанный с FRAS1 белок внеклеточного матрикса) и, вероятно, ген гликозилтрансферазы участвует в формировании толстого слоя гликокаликса на тегументальной поверхности ^13,34 .

Белки, участвующие во взаимодействиях хозяин-паразит

Мы проанализировали протеазы, ингибиторы протеаз (ИП) и экскреторные / секреторные (E / S) белки, которые обычно участвуют во взаимодействии с хозяевами и модуляции иммунных ответов хозяина. ^35,36 .В частности, секретируемые протеазы могут модулировать иммунные ответы Th3 хозяина против гельминтов ³⁷ . Мы предсказали 157 и 161 протеазу, а также 142 и 155 непротеазных гомологов в гномах T. saginata и T. asiatica , которые были сопоставимы с таковыми в E. multilocularis ¹³ (дополнительные данные 5 и 6). Они принадлежат к пяти основным классам (аспарагиновая, цистеиновая, металло, серин и треонин), среди которых преобладают металло- ( n = 46–48), цистеин ( n = 41–44) и сериновые протеазы ( n = 27–30; дополнительный рис.15). Кроме того, 23 и 26 протеаз кодируются верхними 10% высокотранскрибируемых генов у личинок T. saginata и взрослых особей T. asiatica (дополнительная таблица 8). Два генома кодируют 70–71 ИП, которые все являются ингибиторами серина, цистеина и металлопротеаз, включая ИП семейства I39, которые взаимодействуют с эндопептидазами независимо от каталитического типа (дополнительные данные 7). Самым большим семейством PI является I02 ( n = 22, 14,0% у T. saginata и n = 20, 12.4% в T. asiatica ), которые представляют собой сериновые ИП (также известные как ингибиторы Куница; дополнительная таблица 9). Несколько семейств протеаз и ИП были среди наиболее обогащенных белков E / S (дополнительные таблицы 10 и 11). Сравнивая с ИП в S. mansoni , мы идентифицировали несколько семейств ингибиторов, специфичных для ленточных червей (например, I87, I21 и I93), предполагая, что ленточные черви и сосальщики используют механизмы, специфичные для клонов, для регулирования активности протеаз.

Секретомы большие в т.asiatica ( n = 824, 6,18%) и T. saginata ( n = 885, 6,72%; дополнительные таблицы 10 и 11; дополнительный рисунок 16). Многие из них являются протеазами и ИП, как описано выше. Два генома также кодируют большой набор других классов белков E / S, которые могут участвовать в модуляции иммунных ответов хозяина. Например, некоторые «антигены Taeniidae» ( n = 24 в T. asiatica и n = 39 в T. saginata ) могут нарушать хемотаксис нейтрофилов и / или модулировать поляризацию Th3 ³⁸ .Другое большое семейство E / S — это ядовитые аллергеноподобные белки, которые, как известно, модулируют иммунную функцию хозяина и регулируют половое развитие паразитов у хозяина ³⁹ .

Молекулярные мишени для вмешательства и диагностики

Вместе с ранее сообщенными геномами T. solium и Echinococcus , доступность последовательностей генома T. saginata и T. asiatica позволила нам идентифицировать потенциальные цели, общие для все человеческие ленточные черви, но расходящиеся или отсутствующие у хозяев для разработки терапевтических средств.Мы идентифицировали 75–78 рецепторов, связанных с G-белком (GPCR) и 353–355 протеинкиназ у T. asiatica и T. saginata , которые являются хорошо известными классическими мишенями для лекарственных препаратов (дополнительные данные 8 и 9). Большинство GPCR являются белками семейства родопсина ( n = 63), в то время как протеинкиназы охватывают около 10 основных классов, в которых 180 групп киназ (дополнительные данные 9) не могут быть объединены с группами из референсных видов (то есть человека, ). D. melanogaster и C. elegans ), таким образом, могут служить потенциальными идеальными мишенями для лекарств или вакцин против паразитических гельминтов.Ионные каналы, управляемые лигандами (LGIC), являются подтвержденными мишенями для многих современных противоглистных препаратов. Мы идентифицировали по крайней мере 33 члена трех основных семейств LGIC (активируемые глутаматом катионные каналы, цис-петлевые LGIC и АТФ-управляемые ионные каналы) и около 20 членов родственных семейств (то есть катионных каналов, управляемых циклическими нуклеотидами, и амилоридных каналов). -чувствительные натриевые каналы; дополнительные данные 10). Большинство из этих лекарственных мишеней законсервированы среди геномов ленточных червей, поэтому потенциально могут служить мишенями для лекарств широкого спектра действия.

Мы провели дальнейший поиск паразит-специфических последовательностей потенциальных мишеней для лекарств и белков, связанных с взаимодействием паразит-хозяин, и идентифицировали 34 последовательности ( T. saginata ) и 45 последовательностей ( T. asiatica ) без гомологов у млекопитающих. (Дополнительные данные 11 и 12). Большинство этих последовательностей подтверждено данными транскрипции, включая несколько гомологов известных лекарственных мишеней. Среди них цистатин и фитохелатинсинтаза являются главными кандидатами в лекарственные мишени, поскольку они присутствуют у всех ленточных червей и имеют решающее значение для взаимодействия с хозяевами и детоксикации тяжелых металлов, соответственно ^13,40 .

В геномах ленточных червей был проведен поиск видоспецифических генов, потенциально ценных для разработки молекулярных и / или иммунологических диагностических инструментов, особенно для специфического обнаружения азиатского ленточного червя. Мы собрали все гены-единственные копии в геномах T. saginata и T. asiatica и ранжировали их по дивергенции нуклеотидных последовательностей в качестве ресурса сообщества для разработки инструментов молекулярного обнаружения (дополнительные данные 13). Мы также восстановили 15 (против т.saginata ) и 110 (по сравнению с T. solium ) с высокой степенью достоверности видоспецифичных генов, кодирующих белок в геноме T. asiatica (дополнительная таблица 12). Однако возможность использования этих генов в разработке иммунологических тестов требует экспериментальной оценки.

Инфекция Taenia: история вопроса, патофизиология, эпидемиология

Ито А, Вандра Т., Сато МО и др. На пути к международному сотрудничеству в области обнаружения, наблюдения и борьбы с тенозом / цистицеркозом и эхинококкозом в Азиатско-Тихоокеанском регионе. J Trop Med в Юго-Восточной Азии Общественное здравоохранение . 2006. 37 Suppl. 3: 82-90. [Медлайн].

Крейг П., Ито А. Кишечные цестоды. Curr Opin Infect Dis . 2007 октября 20 (5): 524-32. [Медлайн].

Всемирная организация здравоохранения. Тениоз / цистицеркоз. 2018 15 февраля [Полный текст].

Brunetti E, White AC Jr. Цестодные инвазии: эхинококкоз и цистицеркоз. Инфекция Dis Clin North Am .2012 Июнь 26 (2): 421-35. [Медлайн].

Сорвилло Ф., Уилкинс П., Шафир С., Эберхард М. Последствия цистицеркоза для общественного здравоохранения, приобретенного в США. Emerg Infect Dis . 2011 17 января (1): 1-6. [Медлайн].

О’Нил С., Но Дж., Уилкинс П., Кин В., Ламберт В., Андерсон Дж. Инфекция ленточного червя Taenia solium, Орегон, 2006-2009. Emerg Infect Dis . 2011 июн.17 (6): 1030-6. [Медлайн].

Крокер С., Сориано Дж., Сивен Р., Ларсен Р.А., Шварц Б. Центры по контролю и профилактике заболеваний (CDC).Заметки с мест: идентификация переносчика цепня Taenia — округ Лос-Анджелес, 2014. MMWR Morb Mortal Wkly Rep . 2015 30 января. 64 (3): 74. [Медлайн]. [Полный текст].

О’Киф КА, Эберхард М.Л., Шафир СК, Уилкинс П., Эш Л.Р., Сорвилло Ф.Дж. Госпитализации по поводу цистицеркоза в США, 1998-2011 гг. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2015 Февраль 92 (2): 354-9. [Медлайн].

Дель Брутто Огайо. Нейроцистицеркоз. Семин Нейрол .2005 Сентябрь 25 (3): 243-51. [Медлайн].

Канобана К., Прает Н., Кабве С., Дорни П., Лукану П., Мадинга Дж и др. Высокая распространенность цистицероза Taenia solium в деревенской общине Нижнего Конго, Демократическая Республика Конго. Инт Дж Паразитол . 2011 15 августа. 41 (10): 1015-8. [Медлайн].

О’Нил С.Е., Таунс Дж. М., Уилкинс П. П., Но Дж. К., Ли Д., Родригес С. Распространенность антител против Taenia solium Cysticerci среди беженцев, переселенных в США. Emerg Infect Dis . 2012 марта 18 (3): 431-8. [Медлайн].

Ли М.К., Хонг С.Дж., Ким Х.Р. Распространенность тканевых паразитарных инфекций, диагностированная с помощью ELISA в Корее. J Корейская медицина . 2010 Сентябрь 25 (9): 1272-6. [Медлайн]. [Полный текст].

Anantaphruti MT, Okamoto M, Yoonuan T. и др. Молекулярное и серологическое исследование теней и цистицеркозов в провинции Канчанабури, Таиланд. Паразитол Инт .2010 Сентябрь 59 (3): 326-30. [Медлайн].

Юн Х. Обзор зоонозных паразитов в медицине и ветеринарии в Республике Корея. Корейский J Parasitol . 2009 окт.47 Дополнение: S133-41. [Медлайн]. [Полный текст].

Carabin H, Millogo A, Praet N, et al. Распространенность антигенов цистицеркоза Taenia solium среди жителей трех деревень в Буркина-Фасо: перекрестное исследование. PLoS Negl Trop Dis . 2009 24 ноя.3 (11): e555. [Медлайн]. [Полный текст].

Openshaw JJ, Medina A, Felt SA и др. Распространенность и факторы риска цистицеркоза Taenia solium у детей школьного возраста: исследование на базе школы в западном Сычуани, Китайская Народная Республика. PLoS Negl Trop Dis . 2018 8 мая. 12 (5): e0006465. [Медлайн]. [Полный текст].

Нуссинсон Э., Яир-Сабаг С., Шибли Ф. Обнаружение инфекции Taenia saginata, имитирующей болезнь Крона, с помощью эндоскопии видеокапсулы. Clin Case Rep . 2018 г. 4. 6 (4): 741-744. [Медлайн]. [Полный текст].

Флери А., Каррильо-Мезо Р., Флиссер А., Скиутто Е., Корона Т. Субарахноидальный базальный нейроцистицеркоз: основное внимание уделяется наиболее тяжелой форме заболевания. Expert Rev Anti Infect Ther . 2011 января, 9 (1): 123-33. [Медлайн].

Карпио А. Нейроцистицеркоз: обновленная информация. Ланцет Infect Dis . 2002 Декабрь 2 (12): 751-62. [Медлайн].

Гарсия Х. Х., Дель Брутто, Огайо.Нейроцистицеркоз: обновленные представления о старой болезни. Ланцет Нейрол . 2005 г., 4 (10): 653-61. [Медлайн].

Del Brutto OH, Salgado P, Lama J, Del Brutto VJ, Campos X, Zambrano M, et al. Кальцифицированный нейроцистицеркоз ассоциируется с атрофией гиппокампа: популяционное исследование. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2015 Январь 92 (1): 64-8. [Медлайн]. [Полный текст].

Моралес Н.М., Агапеев С., Моралес Р.Р., Падула Н.А., Лима М.М. Клинические аспекты нейроцистицеркоза у детей. Педиатр Нейрол . 2000 апреля, 22 (4): 287-91. [Медлайн].

Cárdenas G, Jung H, Ríos C, Fleury A, Soto-Hernández JL. Тяжелый цистицеркальный менингит: клиника и визуализация. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2010 январь 82 (1): 121-5. [Медлайн]. [Полный текст].

[Рекомендации] Заммарчи Л., Бонати М., Стромейер М. и др. Скрининг, диагностика и лечение цистицеркоза человека и Taenia solium taeniasis: технические рекомендации исследовательской группы проекта COHEMI. Троп Мед Инт Здоровье . 2017 г. 1. 22 (7): 881-894. [Медлайн]. [Полный текст].

Praet N, Verweij JJ, Mwape KE, et al. Байесовское моделирование для оценки тестовых характеристик копрологии, ИФА копроантигенов и новой ПЦР в реальном времени для диагностики теноза. Троп Мед Инт Здоровье . 2013 7 марта. 18 (5): 608-14. [Медлайн]. [Полный текст].

Nkouawa A, Sako Y, Okamoto M, Ito A. Простая идентификация видов Taenia человека с помощью мультиплексной петлевой изотермической амплификации в сочетании с точечным ферментно-связанным иммуносорбентным анализом. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2016 г. 1. 94 (6): 1318–1323. [Медлайн]. [Полный текст].

Canaval Zuleta HJ, Company Campins MM, Dolz Abadía C. Эндоскопия как диагностический и терапевтический альтернативный метод тениоза. Ред. Esp Enferm Dig . 2016 июнь. 108 (6): 371-6. [Медлайн]. [Полный текст].

Michelet L, Fleury A, Sciutto E, Kendjo E, Fragoso G, Paris L, et al. Нейроцистицеркоз человека: сравнение различных диагностических тестов с использованием спинномозговой жидкости. Дж. Клин Микробиол . 2011, январь 49 (1): 195-200. [Медлайн]. [Полный текст].

Ли Ю.М., Хандали С., Хэнкок К., Паттабхи С., Коваленко В.А., Левин А. и др. Серологическая диагностика цистицеркоза человека Taenia solium с использованием рекомбинантных и синтетических антигенов в QuickELISA ™. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2011 апр. 84 (4): 587-93. [Медлайн]. [Полный текст].

Кумар А., Гоенка А.Х., Чоудхари А., Саху Дж. К., Гулати С. Диссеминированный цистицеркоз у ребенка: МРТ-диагностика всего тела с использованием параллельной визуализации. Педиатр Радиол . 2010 Февраль 40 (2): 223-7. [Медлайн].

Nash TE, Ware JM, Mahanty S. Внутрижелудочковый нейроцистицеркоз: опыт и долгосрочные результаты в специализированном центре в США. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2018 июн. 98 (6): 1755-1762. [Медлайн]. [Полный текст].

Garcia HH, Gonzalez AE, Gilman RH. Цистицеркоз центральной нервной системы: как с ним бороться ?. Curr Opin Infect Dis .2011 24 октября (5): 423-7. [Медлайн].

Mazumdar M, Pandharipande P, Poduri A. Влияет ли альбендазол на ремиссию приступов и реакцию компьютерной томографии у детей с нейроцистицеркозом? Систематический обзор и метаанализ. J Детский нейрол . 2007 22 февраля (2): 135-42. [Медлайн].

Garcia HH, Lescano AG, Lanchote VL, Pretell EJ, Gonzales I, Bustos JA, et al. Фармакокинетика комбинированного лечения празиквантелом и альбендазолом при нейроцистицеркозе. Br J Clin Pharmacol . 2011 июл.72 (1): 77-84. [Медлайн]. [Полный текст].

Garcia HH, Gonzales I, Lescano AG, Bustos JA, Zimic M, Escalante D, et al. Эффективность комбинированной противопаразитарной терапии празиквантелом и альбендазолом при нейроцистицеркозе: двойное слепое рандомизированное контролируемое исследование. Ланцет Infect Dis . 2014 14 августа (8): 687-95. [Медлайн].

Келесидис Т., Тиан Н. Множественные внутрижелудочковые нейроцистицеркальные кисты, вылеченные с помощью эндоскопии без противопаразитарной терапии. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2011 Июль 85 (1): 1-2. [Медлайн].

Верма Р., Шарма П., Хурана Н. Тысячи поражений при диссеминированном цистицеркозе. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2011 Октябрь 85 (4): 583. [Медлайн]. [Полный текст].

Американская академия педиатрии. Ленточные глисты (тениоз и цистицеркоз). Красная книга: Отчет Комитета по инфекционным болезням за 2009 год . 28-го. Элк-Гроув-Виллидж, Иллинойс: Американская академия педиатрии; 2009 г.652-4.

Цистицеркоз. Спектор Дж. М., Гибсон Т. Е.. Атлас педиатрии в тропиках и странах с ограниченными ресурсами . Элк-Гроув-Виллидж, Иллинойс: Американская академия педиатрии; 2009. 73-76.

Бартон Бехравеш С., Мэйберри Л.Ф., Бристоль Дж. Р. и др. Обследование населения на тениоз вдоль границы США и Мексики. Энн Троп Мед Паразитол . 2008 июнь 102 (4): 325-33. [Медлайн].

Ботеро Д., Тановиц Н.Б., Вайс Л.М., Виттнер М.Тениоз и цистицеркоз. Инфекция Dis Clin North Am . 1993, 7 сентября (3): 683-97. [Медлайн].

Carabin H, Budke CM, Cowan LD, Willingham AL 3rd, Torgerson PR. Методы оценки бремени паразитарных зоонозов: эхинококкоза и цистицеркоза. Trends Parasitol . 2005 21 июля (7): 327-33. [Медлайн].

Conlan J, Khounsy S, Inthavong P, Fenwick S, Blacksell S, Thompson RC. Обзор тениоза и цистицеркоза в Лаосской Народно-Демократической Республике. Паразитол Инт . 2008 Сентябрь 57 (3): 252-5. [Медлайн].

Conlan JV, Vongxay K, Khamlome B, Dorny P, Sripa B, Elliot A, et al. Поперечное исследование Taenia solium в нескольких эндемичных по тениидам регионах показывает, что конкуренция может быть защитной. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2012 августа 87 (2): 281-91. [Медлайн]. [Полный текст].

Крокер С., Репортер Р., Маскола Л. Использование данных о выписке из больниц штата для оценки экономического бремени нейроцистицеркоза в округе Лос-Анджелес (1991-2008 гг.). Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2010 июл.83 (1): 106-10. [Медлайн].

DeGiorgio CM, Sorvillo F, Escueta SP. Нейроцистицеркоз в Соединенных Штатах: обзор важной возникающей инфекции. Неврология . 2005 26 апреля. 64 (8): 1486; ответ автора 1486. ​​[Medline].

Дель Брутто Огайо. Нейроцистицеркоз у 2-летнего мальчика, инфицированного в домашних условиях. Здоровье Патогенных шаров . 2012 май. 106 (2): 122-3. [Медлайн].

Drimousis PG, Stamou KM, Koutras A, Tsekouras DK, Zografos G.Необычное место рецидива скелетно-мышечной эхинококковой эхинококкоза: описание случая и краткий обзор литературы. Мир Дж. Гастроэнтерол . 2006 14 сентября. 12 (34): 5577-8. [Медлайн].

Флери А., Эрнандес М., Авила М. и др. Обнаружение антигена HP10 в сыворотке для диагностики и последующего наблюдения субарахноидального и внутрижелудочкового нейроцистицеркоза человека. J Neurol Neurosurg Psychiatry . 2007 Сентябрь 78 (9): 970-4. [Медлайн].

Гарсия Х. Х., Дель Брутто, Огайо.Цистицеркоз Taenia solium. Инфекция Dis Clin North Am . 2000 марта, 14 (1): 97-119, ix. [Медлайн].

Гарсия Х. Х., Дель Брутто, Огайо, Нэш Т. Е. и др. Новые концепции в диагностике и лечении нейроцистицеркоза (Taenia solium). Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2005 Январь 72 (1): 3-9. [Медлайн]. [Полный текст].

Garcia HH, Evans CA, Nash TE, et al. Текущие согласованные рекомендации по лечению нейроцистицеркоза. Clin Microbiol Ред. .2002 15 октября (4): 747-56. [Медлайн]. [Полный текст].

Гарсия Х. Х., Гонсалес А. Е., Эванс Калифорния и др. Цистицеркоз Taenia solium. Ланцет . 2003 16 августа. 362 (9383): 547-56. [Медлайн].

Гарсия Х. Х., Гонсалес А. Е., Гилман Р. Х., Рабочая группа по цистицерозу в Перу. Диагностика, лечение и контроль цистицеркоза Taenia solium. Curr Opin Infect Dis . 2003 16 октября (5): 411-9. [Медлайн].

Гарсия Х. Х., Моро ПЛ, Шанц ПМ.Зоонозные гельминтозы человека: эхинококкоз, цистицеркоз и фасциолез. Curr Opin Infect Dis . 2007 октября 20 (5): 489-494. [Медлайн].

Гарсия Л.С., Брукнер Д.А. Кишечные цестоды. Диагностическая медицинская паразитология . 3-е изд. 1997. 308-24.

Гарг РК. Нейроцистицеркоз: фотообзор. Инфекция Дис Клиническая Практика . Июль 2008. 16 (4): 210-7.

Гербер Дж.С., Шах СС.Картинка месяца. Нейроцистицеркоз. Arch Pediatr Adolesc Med . 2006 Октябрь 160 (10): 1081. [Медлайн].

Gonzalez AE, Bustos JA, Jimenez JA, Rodriguez ML, Ramirez MG, Gilman RH, et al. Эффективность различных противопаразитарных методов лечения цистицеркоза на модели свиней. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2012 августа 87 (2): 292-6. [Медлайн]. [Полный текст].

Graeff-Teixeira C, da Silva AC, Yoshimura K. Обновленная информация об эозинофильном менингоэнцефалите и его клинической значимости. Clin Microbiol Ред. . 2009 Apr, 22 (2): 322-48, Содержание. [Медлайн].

Hawk MW, Shahlaie K, Kim KD, Theis JH. Нейроцистицеркоз: обзор. Хирургический нейрол . 2005 февраль, 63 (2): 123–32; обсуждение 132. [Medline].

Hidron A, Vogenthaler N, Santos-Preciado JI, Rodriguez-Morales AJ, Franco-Paredes C, Rassi A Jr. Поражение сердца паразитарными инфекциями. Clin Microbiol Ред. . 2010 г., 23 (2): 324-49.[Медлайн].

Homans J, Khoo L, Chen T и др. Спинальный интрамедуллярный цистицеркоз у ребенка пяти лет: история болезни и обзор литературы. Pediatr Infect Dis J . 2001 Сентябрь 20 (9): 904-8. [Медлайн].

Ито А., Такаянагуи О.М., Сако Й. и др. Нейроцистицеркоз: клинические проявления, нейровизуализация, серология и молекулярное подтверждение гистопатологических образцов. J Trop Med в Юго-Восточной Азии Общественное здравоохранение .2006. 37 Suppl 3: 74-81. [Медлайн].

Kaur S, Singhi P, Singhi S, Khandelwal N. Комбинированная терапия с альбендазолом и празиквантелом по сравнению с одним альбендазолом у детей с судорогами и нейроцистицеркозом с единичным поражением: рандомизированное плацебо-контролируемое двойное слепое исследование. Pediatr Infect Dis J . 2009 Май. 28 (5): 403-6. [Медлайн].

Крафт Р. Цистицеркоз: развивающееся паразитарное заболевание. Врач Фам .2007 г. 1. 76 (1): 91-6. [Медлайн].

Леонард Р., Адикес Э.Д., Брамбак Р.А. Нейроцистицеркоз. J Детский нейрол . 2006 21 июля (7): 589-90. [Медлайн].

Лоос-Франк Б. Обновленная версия работы Верстера (1969) «Таксономическая ревизия рода Taenia Linnaeus» (Cestoda) в табличном формате. Syst Parasitol . 2000 Mar.45 (3): 155-83. [Медлайн].

Lucato LT, Guedes MS, Sato JR, Bacheschi LA, Machado LR, Leite CC.Роль стандартных последовательностей МРТ в оценке нейроцистицеркоза: влияние на характеристики сколекса и нагрузки поражения. AJNR Am J Нейрорадиол . 2007 сентября 28 (8): 1501-4. [Медлайн].

Манделл Г. Х., Беннет Дж. Э., Долин Р. Принципы и практика инфекционных заболеваний . 6-е изд. Черчилль Ливингстон; 2005.

Millogo A, Nitiéma P, Carabin H, Boncoeur-Martel MP, Rajshekhar V, Tarnagda Z, et al.Распространенность нейроцистицеркоза среди людей с эпилепсией в сельских районах Буркина-Фасо. Эпилепсия . 2012 декабрь 53 (12): 2194-202. [Медлайн].

Мишра Д. Головная боль при цистицеркозе: важный отличительный признак головной боли у детей в эндемичных странах. Головная боль . 2007 Февраль 47 (2): 301-2. [Медлайн].

Mwape KE, Phiri I.K, Praet N, Muma JB, Zulu G, Van den Bossche P и др. Инфекции Taenia solium в сельской местности Восточной Замбии — исследование на уровне сообщества. PLoS Negl Trop Dis . 2012. 6 (3): e1594. [Медлайн]. [Полный текст].

Nash TE, Pretell EJ, Lescano AG, Bustos JA, Gilman RH, Gonzalez AE, et al. Перилезионный отек головного мозга и судорожная активность у пациентов с кальцифицированным нейроцистицеркозом: проспективное когортное и вложенное исследование случай-контроль. Ланцет Нейрол . 2008 7 (12) декабря: 1099-105. [Медлайн].

Nash TE, Singh G, White AC, et al. Лечение нейроцистицеркоза: текущее состояние и потребности будущих исследований. Неврология . 2006 Октябрь 10, 67 (7): 1120-7. [Медлайн].

Пинеда Т., Экштейн С., Дитхельм Г., Лечить Дж. Нейроцистицеркоз. Головная боль . 2007 май. 47 (5): 717-8. [Медлайн].

Praet N, Rodriguez-Hidalgo R, Speybroeck N, Ahounou S, Benitez-Ortiz W., Berkvens D. Заражение Taenia solium в сравнении с воздействием Taenia solium: о чем говорят результаты серологических тестов? Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2010 августа 83 (2): 413-5. [Медлайн].

Rosenblatt JE.Лабораторная диагностика инфекций, вызванных паразитами крови и тканей. Клиническая инфекция . 2009 г. 1. 49 (7): 1103-8. [Медлайн].

Salim L, Ang A, Handali S, Tsang VC. Сероэпидемиологическое исследование цистицеркоза-тениоза в четырех центральных высокогорных районах Папуа, Индонезия. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2009 Март 80 (3): 384-8. [Медлайн].

Салинас Р., Прасад К. ОТКАЗ: препараты для лечения нейроцистицеркоза (инфекции головного мозга ленточными червями). Кокрановская база данных Syst Rev . 1999. (4): CD000215. [Медлайн].

Sandes AR, Mouzinho A, Valente P. Орбитальный цистицеркоз: противоречия в диагностике и лечении. Pediatr Infect Dis J . 2007 26 февраля (2): 180-1. [Медлайн].

Sayasone S, Vonghajack Y, Vanmany M, Rasphone O, Tesana S, Utzinger J и др. Разнообразие кишечных гельминтозов человека в Лаосской Народно-Демократической Республике. Транс Р Соц Троп Мед Хиг . 2009 Март 103 (3): 247-54.[Медлайн].

Шанц PM. Ленточные черви (цестодоз). Гастроэнтерол Клин Норт Ам . 1996 Сентябрь 25 (3): 637-53. [Медлайн].

Серпа Дж. А., Моран А., Гудман Дж. К., Джордано Т. П., Уайт А. С. Младший. Нейроцистицеркоз в эпоху ВИЧ: отчет о болезни и обзор литературы. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2007 июл.77 (1): 113-7. [Медлайн].

Serpa JA, Yancey LS, White AC Jr. Успехи в диагностике и лечении нейроцистицеркоза. Expert Rev Anti Infect Ther . 2006 декабрь 4 (6): 1051-61. [Медлайн].

Shandera WX, Kass JS. Нейроцистицеркоз: современные знания и достижения. Curr Neurol Neurosci Rep . 2006 ноябрь 6 (6): 453-9. [Медлайн].

Sorvillo FJ, DeGiorgio C, Waterman SH. Смерть от цистицеркоза, США. Emerg Infect Dis . 2007 13 февраля (2): 230-5. [Медлайн].

Steinmann P, Utzinger J, Du ZW, Jiang JY, Chen JX, Hattendorf J, et al.Эффективность однократного и тройного приема альбендазола и мебендазола против гельминтов, передаваемых через почву, и видов Taenia: рандомизированное контролируемое исследование. PLoS One . 2011. 6 (9): e25003. [Медлайн]. [Полный текст].

Steinmann P, Zhou XN, Du ZW, et al. Трибендимидин и альбендазол для лечения гельминтов, передаваемых через почву, Strongyloides stercoralis и Taenia spp .: открытое рандомизированное исследование. PLoS Negl Trop Dis . 2008. 2 (10): e322. [Медлайн]. [Полный текст].

Венкатеш Р., Равиндран Р. Д., Бхарати Б., Сенгупта С. Цистицеркоз зрительного нерва. Офтальмология . 2008 ноябрь 115 (11): 2094. [Медлайн].

Верма А., Прасад К.Н., Гупта Р.К., Сингх А.К., Ньяти К.К., Ризван А. и др. Полиморфизм Toll-подобного рецептора 4 и его связь с симптоматическим нейроцистицеркозом. J Заразить Dis . 15 октября 2010 г. 202 (8): 1219-25. [Медлайн].

Альт GM, Белый AC Jr, Серпа JA.Геморрагические цереброваскулярные события и нейроцистицеркоз: описание случая и обзор литературы. Ам Дж. Троп Мед Хиг . 2011 Март 84 (3): 402-5. [Медлайн].

Валлин М.Т., Курцке Дж. Ф. Нейроцистицеркоз в Соединенных Штатах: обзор важной возникающей инфекции. Неврология . 2004, 9 ноября. 63 (9): 1559-64. [Медлайн].

Вани С.А., Ахмад Ф., Заргар С.А., Ахмад З., Ахмад П., Так Х. Распространенность кишечных паразитов и связанных с ними факторов риска среди школьников в городе Сринагар, Кашмир, Индия. Дж Паразитол . 2007 декабрь 93 (6): 1541-3. [Медлайн].

Wani SA, Ahmad F, Zargar SA, Dar PA, Dar ZA, Jan TR. Кишечные гельминты в популяции детей из Кашмирской долины, Индия. Дж Гельминтол . 2008 декабрь 82 (4): 313-7. [Медлайн].

Уэббе Г. Цистицеркоз человека: паразитология, патология, клинические проявления и доступные методы лечения. Pharmacol Ther . 1994 Октябрь 64 (1): 175-200. [Медлайн].

Weisse ME, Raszka WV Jr.Цестодная инфекция у детей. Adv Pediatr Infect Dis . 1996. 12: 109-53. [Медлайн].

White AC Jr. Почему при нейроцистицеркозе возникают судороги: это в генах ?. J Заразить Dis . 15 октября 2010 г. 202 (8): 1152-3. [Медлайн].

Паразитические реакции на загрязнение: что мы знаем и куда идем в «Экологической паразитологии» | Паразиты и переносчики

1.

Goater TM, Goater CP, Esch GW. Паразитизм: разнообразие и экология паразитов животных.Кембридж: Издательство Кембриджского университета; 2013.

Google ученый

2.

Сурес Б., Начев М. Экологическая паразитология. Энциклопедия паразитологии. 2015. стр. 1–4.

Google ученый

3.

Snieszko SF. Влияние экологического стресса на вспышки инфекционных болезней рыб. J Fish Biol. 1974. 6: 197–208.

Артикул Google ученый

4.

Зиндерманн CJ. Использование патологических эффектов загрязнителей в программах мониторинга морской среды. Рапп Пи-против Реун Минс Int Explor Mer. 1980; 179: 129–34.

Google ученый

5.

Möller H. Загрязнение и паразитизм в водной среде. Int J Parasitol. 1987. 17: 353–61.

PubMed Статья Google ученый

6.

Хан Р.А., Тулин Дж. Влияние загрязнения на паразитов водных животных.Adv Parasitol. 1991; 30: 201–38.

CAS PubMed Статья Google ученый

7.

Пулен Р. Токсическое загрязнение и паразитизм у пресноводных рыб. Паразитол сегодня. 1992; 8: 58–61.

CAS PubMed Статья Google ученый

8.

Overstreet RM. Паразитарные болезни рыб и их связь с токсикантами и другими факторами окружающей среды. В: Ратон Б., редактор.Патобиология морских и эстуарных организмов. Бока-Ратон: CRC press; 1993. стр. 111–56.

Google ученый

9.

Маккензи К., Уильямс Х. Х., Уильямс Б., Маквикар А. Х., Сиддалл Р. Паразиты как индикаторы качества воды и потенциального использования передачи гельминтов в исследованиях загрязнения морской среды. Adv Parasitol. 1995; 35: 128–44.

Google ученый

10.

Lafferty KD.Экологическая паразитология: что паразиты могут рассказать нам о воздействии человека на окружающую среду? Паразитол сегодня. 1997; 13: 251–5.

CAS PubMed Статья Google ученый

11.

Сурес Б., Сиддалл Р., Таращевский Х. Паразиты как индикаторы накопления загрязнения тяжелыми металлами. Паразитол сегодня. 1999; 15: 16–21.

CAS PubMed Статья Google ученый

12.

Sures B. Экологическая паразитология: значение паразитов в мониторинге загрязнения окружающей среды. Trends Parasitol. 2004; 20: 170–7.

CAS PubMed Статья Google ученый

13.

Marcogliese DJ. Паразиты суперорганизма: являются ли они индикаторами здоровья экосистемы? Int J Parasitol. 2005; 35: 705–16.

PubMed Статья Google ученый

14.

Blanar CA, Munkittrick KR, Houlahan J, MacLatchy DL, Marcogliese DJ. Загрязнение и паразитизм у водных животных: метаанализ величины эффекта. Aquat Toxicol. 2009; 93: 18–28.

CAS PubMed Статья Google ученый

15.

Видаль-Мартинес В.М., Печ Д., Сурес Б., Пурукер С.Т., Пулин Р. Могут ли паразиты действительно проявлять воздействие на окружающую среду? Trends Parasitol. 2010; 26: 44–51.

PubMed Статья Google ученый

16.

Sures B. Накопление тяжелых металлов кишечными гельминтами у рыб: обзор и перспективы. Паразитология. 2003; 126: 53–60.

Артикул CAS Google ученый

17.

Сурес B. Экологическая паразитология. Взаимодействие между паразитами и загрязнителями в водной среде. Паразит. 2008; 15: 434–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

18.

Сурес Б. Взаимодействие паразитов с хозяином в загрязненной среде. J Fish Biol. 2008; 73: 2133–42.

Артикул Google ученый

19.

Начев М., Сурес Б. Экологическая паразитология: паразиты как биоиндикаторы накопления в морской среде. J Sea Res. 2016; 113: 45–50.

Артикул Google ученый

20.

Le Yen TT, Rijsdijk L, Sures B, Jan HA. Накопление стойких органических загрязнителей в паразитах.Chemosphere. 2014; 108: 145–51.

Артикул CAS Google ученый

21.

Sures B, Siddall R. Pomphorhynchus laevis : кишечный скребень как приемник свинца для его рыб-хозяина, голавля ( Leuciscus cephalus ). Exp Parasitol. 1999; 93: 66–72.

CAS PubMed Статья Google ученый

22.

Amiard-Triquet C, Amiard JC, Mouneyrac C.Водная экотоксикология. Лондон: Академический; 2015.

Google ученый

23.

Sures B, Taraschewski H, Jackwerth E. Накопление свинца в Pomphorhynchus laevis и его хозяине. J Parasitol. 1994; 80: 355–7.

CAS PubMed Статья Google ученый

24.

Sures B, Taraschewski H. Концентрации кадмия в двух взрослых скребнях, Pomphorhynchus laevis и Acanthocephalus lucii , по сравнению с рыбами-хозяевами, а также уровни кадмия и свинца в личинках A.lucii по сравнению с ракообразным-хозяином. Parasitol Res. 1995; 81: 494–7.

CAS PubMed Статья Google ученый

25.

Малек М., Хасели М., Мобеди И., Ганджали М.Р., Маккензи К. Паразиты как биоиндикаторы тяжелых металлов у акулы Carcharhinus dussumieri из Персидского залива. Паразитология. 2007. 134: 1053–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

26.

Oluoch-Otiego J, Oyoo-Okoth E, Kiptoo KKG, Chemoiwa EJ, Ngugi CC, Simiyu G, et al. ПХБ в рыбе и их паразитах-цестодах в озере Виктория. Environ Monit Assess. 2016; 188: 483.

PubMed Статья CAS Google ученый

27.

Начев М., Шерцингер Г., Сурес Б. Сравнение способности аккумулировать металл у скребня Pomphorhynchus laevis и личинок нематод рода Eustrongylides sp.Заражающий усач ( Barbus barbus ). Векторы паразитов. 2013; 6:21.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

28.

Amini Z, Pazooki J, Abtahi B, Shokri MR. Биоаккумуляция Zn и Cu в ткани Chasar Bathybius (Gobiidae) и его паразита-нематоды Dichelyne minutus , к юго-востоку от Каспийского моря. Иран Индийский J Mar Sci. 2013; 42: 196–200.

CAS Google ученый

29.

Скворец Я. Кормление, питание и обмен веществ. В: Crompton DWT, Nickol BB, ред. Биология скребней. Кембридж: Издательство Кембриджского университета; 1985. с. 125–212.

Google ученый

30.

Теллез М., Торговец М. Биомониторинг загрязнения тяжелыми металлами с использованием верхушечного водного хищника, американского аллигатора, и его паразитов. PLoS One. 2015; 10, e0142522.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

31.

Lotfy WM, Ezz AM, Hassan AAM. Биоаккумуляция некоторых тяжелых металлов в печени сосальщиков Fasciola hepatica и F. gigantica . Iran J Parasitol. 2013; 8: 552–8.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

32.

Sures B, Jürges G, Taraschewski H. Относительные концентрации тяжелых метелей у паразитов Ascaris suum (Nematoda) и Fasciola hepatica (Digenea) и их соответствующих дефинитивных хозяев свиней и крупного рогатого скота.Int J Parasitol. 1998. 28: 1173–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

33.

Чанг АЧГ, Флорес MJC. Морфология и жизнеспособность имаго Fasciola gigantica (гигантские печеночные двуустки) из Филиппинских карабао ( Bubalus bubalis ) при воздействии свинца in vitro. Азиатский Пак Джей Троп Биомед. 2015; 5: 493–6.

Артикул Google ученый

34.

Qian G, Pin N. Содержание свинца в моногене, Ancyrocephalus mogurndae и в различных органах его хозяина, рыбы-мандарина, Siniperca chuatsi . China Env Sci. 2000. 20: 233–6.

Google ученый

35.

Torres J, Eira C, Miquel J, Foronda P, Feliu C. Концентрации кадмия и свинца в Moniliformis moniliformis (Acanthocephala) и Rodentolepis microstoma (Cestoda), а также в их окончательных хозяевах Rattus. rattus и Mus domesticus в Эль Йерро (Канарский архипелаг, Испания).Acta Parasitol. 2011; 56: 320–4.

CAS Статья Google ученый

36.

Sures B, Franken M, Taraschewski H. Концентрации элементов в архиакантоцефалане Macracanthorhynchus hirudinaceus по сравнению с таковыми в окончательном хозяине свиней с бойни в Ла-Пасе, Боливия. Int J Parasitol. 2000; 30: 1071–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

37.

Sures B, Jürges G, Taraschewski H. Накопление и распределение свинца в архиакантоцефалане Moniliformis moniliformis от экспериментально инфицированных крыс. Паразитология. 2000; 121: 427–33.

CAS PubMed Статья Google ученый

38.

Сурес Б., Рейманн Н. Анализ следов металлов в антарктической системе паразит-хозяин Notothenia coriiceps и Aspersentis megarhynchus (Acanthocephala), пойманных на острове Кинг-Джордж, Южные Шетландские острова.Polar Biol. 2003. 26: 680–6.

Артикул Google ученый

39.

Cobelo-García A, Filella M, Croot P, Frazzoli C, Du Laing G, Ospina-Alvarez N, et al. СТОИМОСТЬ действий TD1407: сеть по критически важным технологическим элементам (УВЕДОМЛЕНИЕ) — от экологических процессов до угроз здоровью человека. Environ Sci Pollut Res. 2015; 22: 15188–94.

Артикул Google ученый

40.

Sures B, Thielen F, Baska F, Messerschmidt J, Von Bohlen A.Кишечный паразит Pomphorhynchus laevis как чувствительный индикатор накопления металлов платиновой группы Pt, Pd и Rh. Environ Res. 2005; 98: 83–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

41.

Циммерманн С., Фон Болен А., Мессершмидт Дж., Сурес Б. Накопление платины, палладия и родия из драгоценных металлов в автомобильных каталитических нейтрализаторах в Paratenuisentis ambiguus по сравнению с его хозяином рыбы, Ангилья, Ангилья .J Helminthol. 2005; 79: 85–9.

CAS PubMed Статья Google ученый

42.

Циммерманн С., Мессершмидт Дж., Фон Болен А., Сурес Б. Поглощение и биоаккумуляция металлов платиновой группы (Pd, Pt, Rh) из материалов автомобильного каталитического нейтрализатора мидиями зебры ( Dreissena polymorpha ). Environ Res. 2005. 98: 203–209.

CAS PubMed Статья Google ученый

43.

Габрашанская М., Недева И. Содержание тяжелых металлов в системе рыбы-цестоды. Parassitologia. 1996; 38: 58.

Google ученый

44.

Турцекова Л., Ханзелова В. Концентрации Cd, As и Pb в неинфицированных и инфицированных Perca fluviatilis с Proteocephalus percae . Helmintologia. 1999; 36: 31.

Google ученый

45.

Sures B, Dezfuli BS, Krug HF.Кишечный паразит Pomphorhynchus laevis (Acanthocephala) препятствует поглощению и накоплению свинца (210Pb) у голавля-хозяина ( Leuciscus cephalus ). Int J Parasitol. 2003; 33: 1617–22.

CAS PubMed Статья Google ученый

46.

Oyoo-Okoth E, Wim A, Osano O, Kraak MH, Ngure V, Makwali J, et al. Использование эндопаразита рыб Ligula Кишечник (L., 1758) в промежуточном хозяине карповых ( Rastreneobola argentea ) для биомониторинга загрязнения тяжелыми металлами в озере Виктория, Кения.Lakes Reserv Res Manag. 2010; 15: 63–73.

CAS Статья Google ученый

47.

Le YTT, Nachev M, Grabner D, Hendriks AJ, Sures B. Разработка и проверка биодинамической модели для механического прогнозирования накопления металлов в системах паразитов рыб. PLoS One. 2016; 11, e0161091.

PubMed PubMed Central Статья Google ученый

48.

Ливингстон Д. Р., Фёрлин Л., Джордж С. Г..Молекулярные биомаркеры и токсические последствия воздействия органических загрязнений на водные организмы. В: Suthcliffe DW, редактор. Показатели качества воды и стресса в морских и пресноводных системах: уровни организации связи. Эмблсайд: Пресноводная биологическая ассоциация; 1994. стр. 154–71.

Google ученый

49.

Форбс В.Е., Палмквист А., Бах Л. Использование и неправильное использование биомаркеров в экотоксикологии. Environ Toxicol Chem. 2006; 25: 272–80.

CAS PubMed Статья Google ученый

50.

Бинелли А., Делла Торре С., Магни С., Паролини М. Представляет ли зебровая мидия ( Dreissena polymorpha ) пресноводный аналог Mytilus в экотоксикологических исследованиях? Критический обзор. Env Pollut. 2015; 196: 386–403.

CAS Статья Google ученый

51.

Амоозаде Э., Малек М., Рашидинеджад Р., Набави С.М., Карбасси М.Р., Гаюми Р. и др.Морские организмы как биоиндикаторы тяжелых металлов в Персидском и Оманском заливах. Environ Sci Pollut R. 2014; 21: 2386–95.

CAS Статья Google ученый

52.

Huang GY, Liu YS, Liang YQ, Shi WJ, Hu LX, Tian F и др. Мульти-биомаркерные реакции как индикатор воздействия загрязнения на Gambusia affinis из рек, подвергшихся воздействию муниципальных стоков. Sci Total Env. 2016; 563: 273–81.

Артикул CAS Google ученый

53.

Marcogliese DJ, Pietrock M. Комбинированное воздействие паразитов и загрязнителей на здоровье животных: паразиты имеют значение. Trends Parasitol. 2011; 27: 123–30.

PubMed Статья Google ученый

54.

Le TTY, Zimmermann S, Sures B. Как индукция металлотионеина у двустворчатых моллюсков соответствует критериям биомаркеров воздействия металлов? Environ Pollut. 2016; 212: 257–68.

CAS PubMed Статья Google ученый

55.

Морли Нью-Джерси, Льюис Дж. В., Хул Д. Вызванные загрязнителями эффекты на иммунологические и физиологические взаимодействия в системах водный хозяин-трематода: последствия для передачи паразитов. J Helminthol. 2006; 80: 137–49.

CAS PubMed Статья Google ученый

56.

Sures B. Как паразитизм и загрязнение влияют на физиологический гомеостаз водных хозяев. J Helminthol. 2006; 80: 151–7.

CAS PubMed Статья Google ученый

57.

Морли, штат Нью-Джерси. Интерактивные эффекты инфекционных болезней и загрязнения водных моллюсков. Aquat Toxicol. 2010; 96: 27–36.

CAS PubMed Статья Google ученый

58.

Sures B, Radszuweit H. Вызванная загрязнением экспрессия белка теплового шока у амфипод На Gammarus roeseli влияют личинки Polymorphus minutus (Acanthocephala). J Helminthol. 2007. 81: 191–7.

CAS PubMed Статья Google ученый

59.

Gismondi E, Beisel J-N, Cossu-Leguille C. Polymorphus minutus влияет на антитоксические реакции Gammarus roeseli , подвергнутых воздействию кадмия. PLoS One. 2012; 7, e41475.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

60.

Эвальд П.В. Эволюция вирулентности: объединяющее звено между паразитологией и экологией. J Parasitol. 1995. 81: 659–69.

CAS PubMed Статья Google ученый

61.

Мартинес-Альварес Р.М., Моралес А.Е., Санс А. Антиоксидантная защита у рыб: биотические и абиотические факторы. Rev Fish Biol Fish. 2005. 15: 75–88.

Артикул Google ученый

62.

Gismondi E, Cossu-Leguille C, Beisel J-N. Меняет ли паразит скребня Polymorphus minutus энергетические резервы и антитоксическую защиту своего промежуточного хозяина Gammarus roeseli ? Паразитология. 2012; 139: 1054–61.

CAS PubMed Статья Google ученый

63.

Chen HY, Grabner DS, Nachev M, Shih SH, Sures B. Влияние скребня Polymorphus minutus и микроспоридиана Dictyocoela duebenum на запасы энергии и стрессовую реакцию кадмия Gammarus fossarum . PeerJ. 2015; 3: e1353.

64.

Франк С.Н., Годехардт С., Начев М., Трубирога А., Клоас В., Сурес Б. Влияние цестоды Ligula кишечника и скребня Polymorphus minutus на уровни белков теплового шока (HSP70) и металлических в их рыбе и ракообразных промежуточных хозяевах.Env Pollut. 2013; 180: 173–9.

CAS Статья Google ученый

65.

Baudrimont M, de Montaudouin X, Palvadeau A. Влияние заражения дигенеевыми паразитами на синтез металлотионеина моллюсками ( Cerastoderma edule ): многомерный полевой мониторинг. Mar Pollut Bull. 2006; 52: 494–502.

CAS PubMed Статья Google ученый

66.

Baudrimont M., de Montaudouin X. Доказательства измененного защитного действия металлотионеинов после воздействия кадмия на инфицированных дигенеевыми паразитами кукол ( Cerastoderma edule ). Паразитология. 2007. 134: 237–45.

CAS PubMed Статья Google ученый

67.

Клоас В., Урбацка Р., Опиц Р., Вюрц С., Берендс Т., Хермелинк Б. и др. Эндокринные нарушения у водных позвоночных. Ann NY Acad Sci. 2009; 1163: 187–200.

CAS PubMed Статья Google ученый

68.

Сегнер Х. Онтогенетические, репродуктивные и демографические изменения у водных организмов: установление причинно-следственной связи между воздействием эндокринно-активных соединений (EAC) и эффектами. Acta Hydrochim Hydrobiol. 2005; 33: 17–26.

CAS Статья Google ученый

69.

Роджерс-Грей Т.П., Смит Дж. Э., Эшкрофт А. Э., Айзек Р. Э., Данн А. М..Механизмы паразитарной смены пола у Gammarus duebeni . Int J Parasitol. 2004. 34: 747–53.

CAS PubMed Статья Google ученый

70.

Терри Р.С., Смит Дж. Э., Шарп Р. Г., Риго Т., Литтлвуд Д. Т. Дж., Айронсайд Дж. Э. и др. Широко распространенная вертикальная передача и связанное с ней искажение соотношения полов у хозяев в эукариотическом типе Microspora. Proc R Soc B Biol Sci. 2004; 271: 1783–9.

Артикул Google ученый

71.

Хеккер М., Карбе Л. Паразитизм у рыб — эндокринный модулятор, имеющий экологическое значение? Aquat Toxicol. 2005. 72: 195–207.

CAS PubMed Статья Google ученый

72.

Морли, штат Нью-Джерси. Паразитизм как источник потенциальных искажений в исследованиях химических веществ, нарушающих работу эндокринной системы, у моллюсков. Mar Pollut Bull. 2006; 52: 1330–2.

CAS PubMed Статья Google ученый

73.

Морли, штат Нью-Джерси. Экологический риск и токсикология воздействия фармацевтических препаратов на человека и ветеринарные отходы на отношения между паразитами и хозяевами в природе Environ Toxicol Pharmacol. 2009; 27: 161–75.

CAS PubMed Статья Google ученый

74.

Arme C, Оуэн Р.В. Возникновение и патология инфекций Ligula Кишечник у британских рыб. J Parasitol. 1968; 54: 272–80.

CAS PubMed Статья Google ученый

75.

Arme C. Ligula Кишечник : Взаимодействие с осью гипофиз-гонад его рыбы-хозяина. J Helminthol. 1997. 71: 83–4.

Артикул Google ученый

76.

Картер В., Пирс Р., Дюфур С., Арме С., Хул Д. Ленточный червь Ligula Кишечник (Cestoda: Pseudophyllidea) подавляет экспрессию ЛГ и половое созревание у своего костистого хозяина, Rutilus rutilus . Репродукция. 2005; 130: 939–45.

CAS PubMed Статья Google ученый

77.

Trubiroha A, Wuertz S, Frank SN, Sures B, Kloas W. Экспрессия субъединиц гонадотропина у плотвы ( Rutilus rutilus , Cyprinidae), инфицированных плероцеркоидами ленточного червя Ligula Кишечник (Cestoda). Int J Parasitol. 2009; 39: 1465–73.

CAS PubMed Статья Google ученый

78.

Trubiroha A, Kroupova H, Wuertz S, Frank SN, Sures B, Kloas W. Естественно вызванное эндокринное нарушение паразитом Ligula Кишечник (Cestoda) у плотвы ( Rutilus rutilus ).Gen Comp Endocrinol. 2010; 166: 234–40.

CAS PubMed Статья Google ученый

79.

Trubiroha A, Kroupova H, Frank SN, Sures B, Kloas W. Ингибирование гаметогенеза цестодой Ligula Кишечник у плотвы ( Rutilus rutilus ) ослабляется в лабораторных условиях. Паразитология. 2011; 138: 648–59.

CAS PubMed Статья Google ученый

80.

Sanchez-Ramirez C, Vidal-Martínez VM, Aguirre-Macedo ML, Rodriguez-Canul RP, Gold-Bouchot G, Sures B. Cichlidogyrus sclerosus (Monogena: Ancyrocephalinae) и его хозяин, Nile tilapreusochrom ( ), как биоиндикаторы химического загрязнения. J Parasitol. 2007; 93: 1097–106.

CAS PubMed Статья Google ученый

81.

Bichet C, Scheifler R, Cœurdassier M, Julliard R, Sorci G, Loiseau C.Урбанизация, металлическое загрязнение и распространенность малярии среди домашних воробьев. PLoS One. 2013; 8, e53866.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

82.

Marcogliese DJ, Dautremepuits C, Gendron AD, Fournier M. Взаимодействие между паразитами и загрязнителями у желтого окуня ( Perca flavescens ) в реке Св. Лаврентия, Канада: последствия для устойчивости и толерантности к паразитам.Может J Zool. 2010. 88: 247–58.

CAS Статья Google ученый

83.

Санчес М.И., Понс I, Мартинес-Аро М., Таггарт М.А., Ленорман Т., Грин А.Дж. Когда паразиты полезны для здоровья: паразитизм цестод увеличивает устойчивость к мышьяку у морских креветок. PLoS Pathog. 2016; 12: 1–19.

Артикул CAS Google ученый

84.

Heinonen J, Kukkonen JVK, Holopainen IJ.Изменения токсичности и летального исхода пентахлорфенола в организме пресноводного моллюска, вызванные температурой и паразитами Pisidium amnicum . Env Toxicol Chem. 2001; 20: 2778–84.

CAS Статья Google ученый

85.

McCahon CP, Brown AF, Pascoe D. Влияние скребня Pomphorhynchus laevis (Muller 1776) на острую токсичность кадмия для его промежуточного хозяина, амфиподы Gammarus pulex (L.). Arch Environ Contam Toxicol. 1988; 17: 239–43.

CAS Статья Google ученый

86.

Браун А.Ф., Паско Д. Паразитизм и чувствительность хозяев к кадмию: скребневая инфекция пресноводных амфипод Gammarus pulex . J Appl Ecol. 1989; 26: 473–87.

CAS Статья Google ученый

87.

Gismondi E, Cossu-Leguille C, Beisel JN.Паразиты скребней: помощь или бремя гаммаридовых амфипод, подвергшихся воздействию кадмия? Экотоксикология. 2012; 21: 1188–93.

CAS PubMed Статья Google ученый

88.

Sparkes TC, Keogh DP, Pary RA. Энергетические затраты на охранное поведение самцов у самцов равноногих, обитающих на ручьях. Oecologia. 1996; 106: 166–71.

Артикул Google ученый

89.

Gheorgiu C, Marcogliese DJ, Скотт М.Зависимые от концентрации эффекты цинка, содержащегося в воде, на динамику популяции Gyrodactylus turnbulli (Monogena) на изолированных гуппи ( Poecilia reticulata ). Паразитология. 2006; 132: 225–32.

90.

Marcogliese DJ, Brambilla LG, Gagné F, Gendron AD. Совместное воздействие паразитизма и загрязнения на биомаркеры окислительного стресса у желтого окуня Perca flavescens . Dis Aquat Organ. 2005. 63: 77–84.

CAS PubMed Статья Google ученый

91.

Thilakaratne IDSIP, McLaughlin JD, Marcogliese DJ. Влияние загрязнения окружающей среды и паразитов на биомаркеры здоровья рыб у пятнистых синевиков Notropis hudsonius (Clinton). J Fish Biol. 2007. 71: 519–38.

Артикул Google ученый

92.

Marcogliese DJ, King KC, Salo HM, Fournier M, Brousseau P, Spear P, et al. Комбинированные эффекты сельскохозяйственной деятельности и паразитов на биомаркеры лягушки-быка, Rana catesbeiana .Aquat Toxicol. 2009. 91: 126–34.

93.

Копривникар Ю. Взаимодействие стрессоров окружающей среды влияет на выживаемость и развитие паразитированных личинок амфибий. Ecol Appl. 2010; 20: 2263–72.

CAS PubMed Статья Google ученый

94.

Pietrock M, Marcogliese DJ. Свободноживущие стадии эндогельминтов: во власти условий окружающей среды. Trends Parasitol. 2003; 19: 293–9.

PubMed Статья Google ученый

95.

Копривникар Дж., Forbes MR, Baker RL. Воздействие загрязняющих веществ на взаимодействие паразитов с хозяином: атразин, лягушки и трематоды. Environ Toxicol Chem. 2007; 26: 2166–70.

CAS PubMed Статья Google ученый

96.

Rohr JR, Raffel TR, Sessions SK, Hudson PJ. Понимание чистого воздействия пестицидов на инфекции трематод амфибий. Ecol Appl. 2008; 18: 1743–53.

PubMed Статья Google ученый

97.

Копривникар Дж., Forbes MR, Baker RL. Влияние атразина на продолжительность жизни, активность и инфекционность церкария. J Parasitol. 2006; 92: 306–11.

CAS PubMed Статья Google ученый

98.

Хуа Дж., Бусс Н., Ким Дж., Орлофске С.А., Ховерман Дж. Т.. Популяционная токсичность шести инсектицидов для трематоды Echinoparyphium sp. Паразитология. 2016; 143: 542–50.

CAS PubMed Статья Google ученый

99.

Raffel TR, Sheingold JL, Rohr JR. Отсутствие токсичности пестицидов для Echinostoma trivolvis яиц и мирацидий. J Parasitol. 2009; 95: 1548–51.

CAS PubMed Статья Google ученый

100.

Пьетрок М., Goater CP. Инфекционность церкарий Ornithodiplostomum ptychocheilus и Posthodiplostomum минимум (Trematoda: Diplostomidae) церкарий после воздействия кадмия. J Parasitol. 2005. 91: 854–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

101.

Скерратт Л.Ф., Бергер Л., Спир Р., Кэшинс С., Макдональд К.Р., Филлотт А.Д. и др. Распространение хитридиомикоза привело к быстрому сокращению и исчезновению лягушек во всем мире. Экологическое здоровье. 2007; 4: 125–34.

Артикул Google ученый

102.

Хэнлон С.М., Пэррис М.Дж. Воздействие пестицидов на возбудителя Batrachochytrium dendrobatidis независимо от потенциальных хозяев.Arch Environ Contam Toxicol. 2012; 63: 137–43.

CAS PubMed Статья Google ученый

103.

Johnson PTJ, Chase JM, Dosch KL, Hartson RB, Gross JA, Larson DJ и др. Водное эвтрофикация способствует развитию патогенных инфекций у амфибий. Proc Natl Acad Sci USA. 2007. 104: 15781–6.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

104.

Evans NA. Влияние меди и цинка на выживаемость и инфекционность Echinoparyphium recurvatum cercariae. Паразитология. 1982; 85: 295–303.

CAS Статья Google ученый

105.

Evans NA. Влияние меди и цинка на жизненный цикл Notocotylus attuatus (Digenea: Notocotylidae). Int J Parasitol. 1982; 12: 363–9.

CAS Статья Google ученый

106.

Король CL, Хигаси Г.И. Schistosoma mansoni : Ион серебра (Ag +) стимулирует и обратимо ингибирует индуцированное липидами проникновение в церкарий. Exp Parasitol. 1992; 75: 31–9.

CAS PubMed Статья Google ученый

107.

Abd Allah AT, Wanas MQ, Thompson SN. Влияние свинца, кадмия и ртути на смертность и инфекционность Schistosoma mansoni cercariae. J Parasitol. 1996. 82: 1024–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

108.

Морли, штат Нью-Джерси, Крейн М., Льюис Дж. У. Токсичность кадмия и цинка для мирацидий Schistosoma mansoni . Паразитология. 2001; 122: 81–5.

CAS PubMed Статья Google ученый

109.

Cheng Y, Chen X, Song W., Kong Z, Li P, Liu Y. Вклад ионов серебра в ингибирование инфекционности церкарий Schistosoma japonicum , вызванной наночастицами серебра.Паразитология. 2013; 140: 617–25.

CAS PubMed Статья Google ученый

110.

Borcherding J, Wolf J. Влияние взвешенных частиц на острую токсичность 2-хлор-4-нитро-анилина, кадмия и пентахлорфенола на реакцию клапана на движение клапана у мидий зебры ( Dreissena polymorpha ). Arch Environ Contam Toxicol. 2001; 40: 497–504.

CAS PubMed Статья Google ученый

111.

Poulin R. Функциональное значение паразитов в сообществах животных: много ролей на разных уровнях? Int J Parasitol. 1999; 29: 903–14.

CAS PubMed Статья Google ученый

112.

Marcogliese DJ. Паразиты: маленькие игроки с решающими ролями в экологическом театре. Экологическое здоровье. 2004; 1: 151–64.

Артикул Google ученый

113.

Костанза Р., Маго М.Что такое здоровая экосистема? Aquat Ecol. 1999; 33: 105–15.

Артикул Google ученый

114.

Хадсон П.Дж., Добсон А.П., Лафферти К.Д. Разве здоровая экосистема богата паразитами? Trends Ecol Evol. 2006; 21: 381–5.

PubMed Статья Google ученый

115.

Халил М., Фернесс Д. Н., Жолобенко В., Хул Д. Влияние паразитирования ленточных червей на токсичность кадмия в биоиндикаторе веслоногих ракообразных, Cyclops strenuus .Ecol Indic. 2014; 37: 21–6.

CAS Статья Google ученый

116.

Гилберт Б.М., Авенант-Олдевейдж А. Влияние изменения качества воды и микроэлементов на переменные инфекции Paradiplozoon ichthyoxanthon (Monogena: Diplozoidae) с двух участков в системе реки Ваал, Южная Африка. Acta Parasitol. 2016; 61: 52–62.

PubMed Статья Google ученый

117.

Gilbert BM, Avenant-Oldewage A. Выводимость и выживаемость онкомирацидий Paradiplozoon ichthyoxanthon (Monogena: Diplozoidae) при воздействии водного раствора алюминия. Векторы паразитов. 2016; 9: 420.

PubMed PubMed Central Статья Google ученый

118.

Blanar CA, MacLatchy DL, Kieffer JD, Munkittrick KR. Воздействие смеси цинка и меди снижает выживаемость и плодовитость Discocotyle sagittata (Leuckart), паразитирующих на молоди атлантического лосося, Salmo salar L.Bull Environ Contam Toxicol. 2010; 84: 692–7.

CAS PubMed Статья Google ученый

119.

Георгиу К., Кейбл Дж., Маркольезе Д.И., Скотт М.Э. Влияние содержащегося в воде цинка на воспроизводство, выживаемость и морфометрию Gyrodactylus turnbulli (Monogena) на гуппи ( Poecilia reticulata ). Int J Parasitol. 2007; 37: 375–81.

CAS PubMed Статья Google ученый

120.

Marcogliese DJ. Последствия изменения климата для паразитизма животных в водной среде. Может J Zool. 2001; 79: 1331–52.

Артикул Google ученый

121.

Жерар С., Карпентье А., Пайлиссон Дж. М.. Многолетняя динамика и структура сообщества пресноводных брюхоногих моллюсков, подверженных паразитизму и другим стрессорам окружающей среды. Freshw Biol. 2008. 53: 470–84.

Артикул Google ученый

122.

Shea J, Kersten GJ, Puccia CM, Stanton AT, Stiso SN, Helgeson ES и др. Использование паразитов в качестве индикаторов здоровья экосистемы по сравнению с насекомыми в пресноводных озерах внутреннего северо-запада. Ecol Indic. 2012; 13: 184–8.

Google ученый

123.

Huspeni TC, Lafferty KD. Использование личинок трематод, паразитирующих на улитках, для оценки проекта восстановления солончаков. Ecol Appl. 2004. 14: 795–804.

Артикул Google ученый

124.

Хечингер РФ, Лафферти К.Д. Разнообразие хозяев порождает разнообразие паразитов: конечные хозяева птиц и трематоды в промежуточных хозяевах улиток. Proc R Soc B Biol Sci. 2005. 272: 1059–66.

Артикул Google ученый

125.

Начев М., Суреш Б. Фауна эндогельминтов усачей ( Barbus barbus ) коррелирует с качеством воды реки Дунай в Болгарии. Паразитология. 2009; 136: 545–52.

CAS PubMed Статья Google ученый

126.

Чепмен Дж. М., Маркольезе ди-джей, Суски CD, Кук SJ. Изменчивость сообществ паразитов и показателей здоровья молоди Lepomis gibbosus в зависимости от градиента землепользования водосбора и качества среды обитания. Ecol Indic. 2015; 57: 564–72.

Артикул Google ученый

127.

Перес-дель-Ольмо А., Рага Дж. А., Костадинова А., Фернандес М. Сообщества паразитов в Boops boops (L.) (Sparidae) после разлива нефти Prestige: обнаруживаемые изменения.Mar Pollut Bull. 2007. 54: 266–76.

PubMed Статья CAS Google ученый

128.

Blanar CA, Hewitt M, McMaster M, Kirk J, Wang Z, Norwood W. и др. Сходство сообществ паразитов у форель-окуня реки Атабаска ( Percopsis omiscomaycus ) варьируется в зависимости от землепользования и отложений углеводородов в местном масштабе, но не от расстояния или линейных градиентов. Parasitol Res. 2016; 115: 3853–66.

CAS PubMed Статья Google ученый

129.

Маркольезе Д.Дж., Гендрон А.Д., Планте С., Фурнье М., Сир Д. Паразиты пятнистых шиншиллов ( Notropis hudsonius ) в реке Св. Лаврентия: влияние муниципальных стоков и среды обитания. Может J Zool. 2006; 84: 1461–81.

CAS Статья Google ученый

130.

Marcogliese DJ, Gendron AD, Cone DK. Влияние городских стоков и гидрологического режима на миксозойные паразитические сообщества рыб. Int J Parasitol. 2009; 39: 1345–51.

CAS PubMed Статья Google ученый

131.

Marcogliese DJ, Locke SA, Gélinas M, Gendron AD. Изменчивость сообществ паразитов у пятнистых синевиков ( Notropis hudsonius ), связанных с осадками. J Parasitol. 2016; 102: 27–36.

PubMed Статья Google ученый

132.

Blanar CA, Marcogliese DJ, Couillard CM. Природные и антропогенные факторы формируют структуру сообщества паразитов многоклеточных животных у мумихога ( Fundulus heteroclitus ) из двух эстуариев в Нью-Брансуике, Канада.Folia Parasitol. 2011; 58: 240–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

133.

Рор Дж. Р., Маккой К.А. Качественный мета-анализ показывает постоянное воздействие атразина на пресноводных рыб и амфибий. Перспектива здоровья окружающей среды. 2010; 118: 20–32.

CAS PubMed Статья Google ученый

134.

Рор Дж. Р., Маккой К. А.. Сохранение здоровья окружающей среды и научного доверия: практическое руководство по уменьшению конфликта интересов.Conserv Lett. 2010; 3: 143–50.

Артикул Google ученый

135.

Blaustein AR, Johnson PTJ. Объяснение уродства лягушки. Sci Am. 2003. 288: 60–5.

PubMed Статья Google ученый

136.

Johnson PTJ, Chase JM. Паразиты в пищевой сети: связь между пороками развития земноводных и эвтрофикацией водной среды. Ecol Lett. 2004; 7: 521–6.

Артикул Google ученый

137.

Копривникар Дж., Бейкер Р.Л., Форбс МР. Факторы окружающей среды, влияющие на распространенность трематод у головастиков серой древесной лягушки ( Hyla versicolor ) в южной части Онтарио. J Parasitol. 2006; 92: 997–1001.

PubMed Статья Google ученый

138.

Копривникар Дж., Бейкер Р.Л., Форбс МР. Факторы окружающей среды, влияющие на состав сообществ брюхоногих моллюсков и их паразитов-трематод в южном Онтарио. J Parasitol.2007; 93: 992–8.

PubMed Статья Google ученый

139.

King KC, McLaughlin JD, Gendron AD, Pauli BD, Giroux I, Rondeau B, et al. Воздействие сельского хозяйства на сообщества паразитов северных лягушек леопарда ( Rana pipiens ) в южной части Квебека, Канада. Паразитология. 2007; 134: 2063–80.

CAS PubMed Google ученый

140.

King KC, Daniel Mclaughlin J, Boily M, Marcogliese DJ.Влияние сельскохозяйственных ландшафтов и пестицидов на паразитизм местных лягушек-быков. Биол Консерв. 2010; 143: 302–10.

Артикул Google ученый

141.

Rohr JR, Schotthoefer AM, Raffel TR, Carrick HJ, Halstead N, Hoverman JT, et al. Агрохимикаты увеличивают инфекцию трематод у исчезающих видов земноводных. Природа. 2008; 455: 1235–9.

CAS PubMed Статья Google ученый

142.

Schotthoefer AM, Rohr JR, Cole RA, Koehler AV, Johnson CM, Johnson LB, et al. Влияние переменных водно-болотных угодий и ландшафта на сообщества паразитов Rana pipiens : Связь с антропогенными факторами. Ecol Appl. 2011; 21: 1257–71.

PubMed Статья Google ученый

143.

Копривникар Дж., Редферн Дж. Влияние сельского хозяйства на паразитизм амфибий: важность общих нарушений среды обитания и жизненных циклов паразитов.J Wildl Dis. 2012; 48: 925–36.

PubMed Статья Google ученый

144.

McKenzie VJ, Townsend AR. Реакции паразитарных и инфекционных заболеваний на изменение глобального цикла питания. Экологическое здоровье. 2007; 4: 384–96.

Артикул Google ученый

145.

Johnson PTJ, Carpenter SR. Влияние эвтрофикации на болезни в водных экосистемах: закономерности, процессы и прогнозы.В: Остфельд Р.С., Кизинг Ф., Эвинер В.Т., редакторы. Экология инфекционных заболеваний: влияние экосистем на болезни и болезни на экосистемы. Принстон: Издательство Принстонского университета; 2008. с. 71–99.

Google ученый

146.

Johnson PTJ, Townsend AR, Cleveland CC, Glibert PM, Howarth RW, Mckenzie VJ, et al. Связь между обогащением питательными веществами окружающей среды и возникновением болезней у людей и диких животных. Ecol Appl. 2010; 20: 16–29.

PubMed PubMed Central Статья Google ученый

147.

Эрнандес А.Д., Баннелл Дж. Ф., Сухдео MVK. Состав и особенности разнообразия сообществ паразитов многоклеточных и антропогенные нарушения в экосистемах ручьев. Паразитология. 2007. 134: 91–102.

CAS PubMed Статья Google ученый

148.

Feld CK, Birk S, Bradley DC, Hering D, Kail J, Marzin A, et al. От естественных рек к деградировавшим и обратно. Тест теории и практики реставрационной экологии. Adv Ecol Res.2011; 44: 119–209.

Артикул Google ученый

149.

Morley NJ, Lewis JW, Canal UK. Антропогенное давление на сообщество моллюсков-трематод в течение длительного периода в канале Бейзингсток, Великобритания, и его последствия для здоровья экосистемы. Экологическое здоровье. 2006; 3: 269–80.

Артикул Google ученый

150.

Видаль-Мартинес В.М. Гельминты и простейшие водных организмов как биоиндикаторы химического загрязнения.Parassitologia. 2007. 49: 177–84.

PubMed Google ученый

151.

Marcogliese DJ. Междисциплинарность в морской паразитологии. В: Афонсо-Диас I, Менезес Дж., Маккензи К., Эйрас Дж., Редакторы. Материалы международного семинара по морской паразитологии: Прикладные аспекты морской паразитологии. Понта-Делгада: Азорский университет; 2008. с. 7–14.

Google ученый

152.

Видал-Мартинес В.М., Агирре-Маседо М.Л., Дель Рио-Родригес Р., Голд-Бушот Г., Рендон-фон Остен Дж., Миранда-Росас Г.А. Розовая креветка Farfantepenaeus duorarum , ее симбионты и гельминты как биоиндикаторы химического загрязнения в заливе Кампече, Мексика. J Helminthol. 2006; 80: 159–74.

PubMed Статья CAS Google ученый

153.

Печ Д., Видаль-Мартинес В.М., Агирре-Маседо М.Л., Голд-Бушо Г., Эррера-Силвейра Дж., Сапата-Перес О. и др.Клетчатый фугу ( Spheroides testudineus ) и его гельминты как биоиндикаторы химического загрязнения прибрежных лагун Юкатана. Sci Total Environ. 2009; 407: 2315–24.

CAS PubMed Статья Google ученый

154.

Giraudo M, Bruneau A, Gendron AD, Brodeur P, Pilote M, Marcogliese DJ, et al. Комплексная пространственная оценка здоровья популяций желтого окуня ( Perca flavescens ) из ст.Река Лаврентия, Квебек, Канада), часть A: физиологические параметры и оценка патогенов. Environ Sci Pollut Res. 2016; 23: 18073–84.

CAS Статья Google ученый

155.

Bruneau A, Landry C, Giraudo M, Douville M, Brodeur P, Boily M, et al. Комплексная пространственная оценка здоровья популяций желтого окуня ( Perca flavescens ) из реки Св. Лаврентия (Квебек, Канада), часть B: клеточные и транскриптомные эффекты.Environ Sci Pollut Res. 2016; 23: 18211–21.

Артикул Google ученый

156.

Marcogliese DJ, Blaise C, Cyr D, de Lafontaine Y, Fournier M, Gagné F, et al. Воздействие крупных муниципальных стоков на реку Святого Лаврентия: тематическое исследование. Амбио. 2015; 44: 257–74.

PubMed Статья Google ученый

157.

Филипович Мариджич V, Вардич Смрзлич I, Распор Б.Влияет ли воспроизводство и метаболическая активность рыб на уровень металлов в кишечных паразитах рыб, скребнях, во время нереста рыб и в послеродовой период? Chemosphere. 2014; 112: 449–55.

PubMed Статья CAS Google ученый

158.

Филипович Мариджич В., Вардич Смрзлич И., Распор Б. Влияние инфекции скребня на металлы, общий белок и концентрации металлотионеина в европейском голавле из участка реки Сава с низким содержанием металлов.Sci Total Environ. 2013; 463–464: 772–80.

PubMed Статья CAS Google ученый

159.

Jankovská I, Miholová D, Petrtýl M, Romočuský Š, Kalous L, Vadlejch J, et al. Кишечный паразит Acanthocephalus lucii (Acanthocephala) европейского окуня ( Perca fluviatilis ) в качестве биоиндикатора загрязнения свинцом ручья «Еванский поток» недалеко от Праги, Чешская Республика. Bull Environ Contam Toxicol.2011; 86: 342–6.

PubMed Статья CAS Google ученый

160.

Бразова Т., Торрес Дж., Эйра С., Ханзелова В., Миклисова Д., Шаламун П. Окунь и его паразиты как биомониторы тяжелых металлов в пресной воде: тематическое исследование Ружинского водохранилища. Словакия Сенсоры. 2012; 12: 3068–81.

PubMed Статья CAS Google ученый

161.

Jankovská I, Kolihová D, Miholová D, Lukešová D, Romočuský S, Válek P, et al.Влияние инфекции Acanthocephalus lucii на общую концентрацию ртути в мышцах и гонадах рыб-хозяев ( Perca fluviatilis ). Bull Environ Contam Toxicol. 2012; 88: 967–70.

PubMed Статья CAS Google ученый

162.

Бразова Т., Ханзелова В., Миклисова Д., Шаламун П., Видаль-Мартинес В.М. Взаимоотношения между хозяином и паразитом как детерминанты концентрации тяжелых металлов в окунях ( Perca fluviatilis ) и его кишечной паразитарной инфекции.Ecotoxicol Environ Saf. 2015; 122: 551–6.

PubMed Статья CAS Google ученый

163.

Jankovská I, Miholová D, Lukešová D, Kalous L, Válek P, Romočuský Š, et al. Концентрации Zn, Mn, Cu и Cd в различных тканях окуня ( Perca fluviatilis ) и кишечного паразита окуня ( Acanthocephalus lucii ) из ручья недалеко от Праги (Чешская Республика). Environ Res. 2012; 112: 83–5.

PubMed Статья CAS Google ученый

164.

Paller VGV, Resurreccion DJB, de la Cruz CPP, Bandal MZ. Паразиты скребней ( Acanthogyrus sp.) Нильской тилапии ( Oreochromis niloticus ) в качестве загрязнения свинцом (Pb) в пресноводном озере Филиппин. Bull Environ Contam Toxicol. 2016; 96: 810–5.

165.

Теймури С., Сабур Яраги А., Макки М.С., Шахбази Ф., Назмара С., Рокни МБ и др. Способность кишечных гельминтов к биоабсорбции тяжелых металлов у городских крыс. Иран Дж. Общественное здравоохранение. 2014; 43: 310–5.

PubMed PubMed Central Google ученый

166.

Начев М., Циммерманн С., Риго Т., Сурес Б. Зависит ли накопление металлов в Pomphorhynchus laevis от пола паразита или размера инфрапопуляции? Паразитология. 2010; 137: 1239–48.

CAS PubMed Статья Google ученый

167.

Баруш В., Шимкова А., Прокеш М., Пежаз М., Ветешник Л. Тяжелые металлы в двух системах паразит-хозяин: ленточный червь vs.рыбы. Acta Vet Brno. 2012; 81: 313–7.

Артикул Google ученый

168.

Retief NR, Avenant-Oldewage A, du Preez H. Использование паразитов-цестод из большеротых желтохвостов, Labeobarbus kimberleyensis (Gilchrist and Thompson, 1913) в плотине Ваал, Южная Африка, в качестве индикаторов тяжелой биоаккумуляция металлов. Phys Chem Earth. 2006; 31: 840–7.

Артикул Google ученый

169.

Jirsa F, Leodolter-Dvorak M, Krachler R, Frank C. Тяжелые металлы в носу, Chondrostoma nasus (L. 1758) и его кишечные паразиты Caryophyllaeus laticeps (Pallas 1781) из рек Австрии: биоиндикативные аспекты. Arch Environ Contam Toxicol. 2008; 55: 619–26.

CAS PubMed Статья Google ученый

170.

Торрес Дж., Эйра С., Микель Дж., Феррер-Маза Д., Дельгадо Е., Касадеваль М. Влияние кишечного цепня Clestobothrium crassiceps на концентрацию токсичных элементов и селена в хеках Merluccius merluccius из Лионский залив (северо-запад Средиземного моря).J. Agric Food Chem. 2015; 63: 9349–56.

171.

Торрес Дж., Де Лапуэнте Дж., Эйра С., Надаль Дж. Концентрации кадмия и свинца в Gallegoide sarfaai (Cestoda: Anoplocephalidae) и Apodemus sylvaticus (Rodentia: Muridae) из Испании. Parasitol Res. 2004; 94: 468–70.

CAS PubMed Статья Google ученый

172.

Моррис Т., Авенант-Олдевейдж А., Ламберт С., Рид С. Паразиты акул как биоиндикаторы металлов в двух южноафриканских заливах.Mar Pollut Bull. 2016; 104: 221–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

173.

Аль-Кураиши С., Гевик М.М., Абдель-Баки А.А. Кишечная цестода Hymenolepis diminuta как приемник свинца для крыс-хозяев в промышленных районах Эр-Рияда, Саудовская Аравия. Саудовский университет J Biol Sci King Saud University. 2014; 21: 387–90.

Артикул Google ученый

174.

Чадкова З., Михолова Д., Шакова Й., Валек П., Янковска И., Лангрова И. Способен ли ленточный червь влиять на концентрацию свинца в тканях у белых крыс? Паразитология. 2014; 141: 826–36.

PubMed Статья CAS Google ученый

175.

Courtney-Hogue C. Накопление тяжелых металлов в Lacistorhynchus dollfusi (Trypanorhyncha: Lacistorhynchidae), заражающих Citharichthys sordidus (Pleuronectiformes: Bothidae) из залива Санта-Моника, юг Калифорнии.Паразитология. 2016; 143: 794–9.

176.

Текин-Озан С., Кир И. Сравнительное исследование накопления тяжелых металлов в различных органах линя ( Tinca tinca L. 1758) и плероцеркоидов его эндопаразита Ligula Кишечник . Parasitol Res. 2005; 97: 156–9.

PubMed Статья Google ученый

177.

Текин-Озан С., Кир И. Концентрации некоторых тяжелых металлов в лине ( Tinca tinca L., 1758), его эндопаразит ( Ligula Кишечник L., 1758), отложения и вода в озере Бейшехир, Турция. Pol J Environ Stud. 2008; 17: 597–603.

Google ученый

178.

Jankovská I, Miholová D, Bejček V, Vadlejch J, Šulc M, Száková J, et al. Влияние паразитизма на содержание микроэлементов в тканях Red Fox ( Vulpes vulpes ) и его паразитов Mesocestoides spp. (Cestoda) и Toxascaris leonina (Nematoda).Arch Environ Contam Toxicol. 2010. 58: 469–77.

PubMed Статья CAS Google ученый

179.

Jankovská I, Vadlejch J, Száková J, Miholová D, Kunc P, Knížková I, et al. Экспериментальные исследования накопления свинца в цестоде Moniezia expansa (Cestoda: Anoplocephalidae) и ее конечном хозяине ( Ovis aries ). Экотоксикология. 2010; 19: 928–32.

PubMed Статья CAS Google ученый

180.

Jankovská I, Vadlejch J, Száková J, Miholová D, Kunc P, Knížková I, et al. Экспериментальные исследования накопления кадмия в цестоде Moniezia expansa (Cestoda: Anoplocephalidae) и ее конечном хозяине ( Ovis aries ). Exp Parasitol. 2010; 126: 130–4.

PubMed Статья CAS Google ученый

181.

Эйра К., Торрес Дж., Вингада Дж., Микель Дж. Концентрация некоторых токсичных элементов в Oryctolagus cuniculus и в его кишечной цестоде Mosgovoyia ctenoides , в Дунас-де-Мира (Португалия).Sci Total Environ. 2005; 346: 81–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

182.

Янковска И., Михолова Д., Лангрова И., Бейчек В., Вадлейч Ю., Колихова Д. и др. Влияние паразитизма на использование мелких наземных грызунов в мониторинге загрязнения окружающей среды. Environ Pollut. 2009. 157: 2584–6.

PubMed Статья CAS Google ученый

183.

Golestaninasab M, Malek M, Roohi A, Karbassi AR, Amoozadeh E, Rashidinejad R, et al. Исследование способности к биоконцентрации некоторых морских паразитических и свободноживущих организмов в Оманском заливе. Ecol Indic. 2014; 37: 99–104.

CAS Статья Google ученый

184.

Eira C, Torres J, Miquel J, Vaqueiro J, Soares AMVM, Vingada J. Концентрации микроэлементов в Proteocephalus macrocephalus (Cestoda) и Anguillicola crassus (Nematoda) по сравнению с их хозяином рыбы Anguilla anguilla в Риа-де-Авейру.Portugal Sci Total Environ. 2009; 407: 991–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

185.

Torres J, Foronda P, Eira C, Miquel J, Feliu C. Концентрации микроэлементов в Raillietina micracantha по сравнению с его окончательным хозяином, диким голубем Columba livia в Санта-Крус-де-Тенерифе (Канарские острова). Архипелаг, Испания). Arch Environ Contam Toxicol. 2010. 58: 176–82.

CAS PubMed Статья Google ученый

186.

Йен Нхи Т.Т., Мохд Шазили Н.А., Шахаром-Харрисон Ф. Использование цестод в качестве индикатора загрязнения тяжелыми металлами. Exp Parasitol. 2013; 133: 75–9.

PubMed Статья CAS Google ученый

187.

Torres J, Peig J, Eira C., Borrás M. Концентрации кадмия и свинца в Skrjabinotaenia lobata (Cestoda: Catenotaeniidae) и в его хозяине, Apodemus sylvaticus (Rodentia: Muridae). сайт Гарраф (Испания).Environ Pollut. 2006; 143: 4–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

188.

Мендес П., Эйра К., Вингада Дж., Микель Дж., Торрес Дж. Система T etrabothrius bassani (Tetrabothriidae) / Morus bassanus (Sulidae) как биоиндикатор загрязнения морской среды тяжелыми металлами. Acta Parasitol. 2013; 58: 21–5.

CAS PubMed Статья Google ученый

189.

Genc E, Sangun MK, Dural M, Can MF, Altunhan C. Концентрации элементов в паразите плавательного пузыря Anguillicola crassus (Nematoda) и его хозяине, европейском угре, Anguilla anguilla из реки Аси (Хатай, Турция). Environ Monit Assess. 2008; 141: 59–65.

190.

Морси К., Баштар А.Р., Абдель-Гаффар Ф., Мельхорн Х., Курейши С.А., Эль-Махди М. и др. Первое обнаружение молоди анисакид (Nematoda) в европейском морском окуне Dicentrarchus labrax (семейство: Moronidae) и их роль в качестве биоиндикаторов загрязнения тяжелыми металлами.Parasitol Res. 2012; 110: 1131–8.

PubMed Статья Google ученый

191.

Азмат Р., Файяз С., Кази Н., Махмуд С.Дж., Уддин Ф. Естественная биоремедиация тяжелых металлов через нематод, паразитирующих на рыбах. Биотехнология. 2008; 7: 139–43.

CAS Статья Google ученый

192.

Робинсон С.А., Форбс М.Р., Хеберт К.Э. Ртуть в паразитических нематодах и трематодах и их хозяевах с двойным гребнем бакланов: биоаккумуляция перед лицом секвестрации нематодами.Sci Total Environ. 2010; 408: 5439–44.

CAS PubMed Статья Google ученый

193.

Leite LAR, Pedro NHO, Azevedo RKD, Kinoshita A, Gennari RF, Watanabe S, et al. Contracaecum sp. паразитирующие Acestrorhynchus lacustris в качестве биоиндикатора загрязнения металлами реки Баталья, юго-восток Бразилии. Sci Total Environ. 2017; 575: 836–40.

194.

Khaleghzadeh-Ahangar H, Malek M, McKenzie K.Паразитические нематоды Hysterothylacium sp. личинки типа MB как биоиндикаторы свинца и кадмия: сравнительное исследование тканей паразита и хозяина. Паразитология. 2011; 138: 1400–5.

CAS PubMed Статья Google ученый

195.

Dural M, Genc E, Yemenicioǧlu S, Kemal Sangun M. Сезонное накопление некоторых тяжелых металлов в Hysterothylacium aduncum (Nematoda) и его хозяине Red Sea Bream, Pagellus erythrinus (Sparidae) Искендерун (северо-восточное Средиземноморье).Bull Environ Contam Toxicol. 2010. 84: 125–31.

196.

Dural M, Genc E, Sangun MK, Güner Ö. Накопление некоторых тяжелых металлов в Hysterothylacium aduncum (Nematoda) и морском леще-хозяине Sparus aurata (Sparidae) из северо-восточной части Средиземного моря (залив Искендерун). Environ Monit Assess. 2011; 174: 147–55.

197.

Абдель-Гаффар Ф., Абдель-Габер Р., Баштар А.Р., Морси К., Мельхорн Х., Аль Кураиши С. и др. Hysterothylacium aduncum (Nematoda, Anisakidae) с новой записью-хозяином от обыкновенной подошвы Solea solea (Soleidae) и ее роль в качестве биологического индикатора загрязнения.Parasitol Res. 2014; 114: 513–22.

PubMed Статья Google ученый

198.

Мажар Р., Шазили Н.А., Харрисон Ф.С. Сравнительное исследование накопления металлов в Hysterothylacium reliquens (нематода) и Paraphilometroides nemipteri (нематода) по сравнению с их дважды инфицированным хозяином, Nemipterus peronii (зубчатый лещ). Parasitol Res. 2014; 113: 3737–43.

199.

Баруш В., Ярковский Ю., Прокеш М. Philometra ovata (Nematoda: Philometroida): потенциальный вид-охранник накопления тяжелых металлов. Parasitol Res. 2007. 100: 929–33.

PubMed Статья Google ученый

200.

Акинсанья Б., Кутон МП. Биоаккумуляция тяжелых металлов и паразитарная фауна в Synodontis clarias (Linnaeus, 1758) и Chrysichthys nigrodigitatus (Lacepede, 1803) из лагуны Лекки, Лагос, Нигерия.Азиатско-Тихоокеанский регион J Trop Dis. 2016; 6: 615–21.

Артикул Google ученый

201.

Торрес Дж., Касем Х., Эйра С., Нейфар Л., Микель Дж. Общие концентрации ртути и селена в Sarpa salpa и Balistes capriscus и в их соответствующих дигенеевых эндопаразитах Robphildollfusium Fractum из Туниса. Acta Parasitol. 2014; 59: 580–5.

CAS PubMed Статья Google ученый

202.

Jankovská I, Sloup V, Száková J, Langrová I., Sloup S. Как ленточный червь Hymenolepis diminuta влияет на накопление цинка и кадмия в организме хозяина, питающегося гипераккумулирующим растением ( Arabidopsis halleri ). Environ Sci Pollut Res. 2016; 23: 19126–33.

Артикул CAS Google ученый

203.

Провенчер Дж.Ф., Браун Б.М., Гилкрист Г.Г., Форбс М.Л., Мэллори М.Л. Концентрации микроэлементов и паразиты желудочно-кишечного тракта у полярных крачек, размножающихся в высокогорных районах Канады.Sci Total Env. 2014; 476–477: 308–16.

Артикул CAS Google ученый

204.

Hursky O, Pietrock M. Кишечные нематоды влияют на биоаккумуляцию селена, биомаркеры окислительного стресса и параметры здоровья молоди радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Env Sci Technol. 2015; 49: 2469–76.

CAS Статья Google ученый

205.

Bergey L, Weis JS, Weis P.Поглощение ртути эстуарными видами Palaemonetes pugio и Fundulus heteroclitus по сравнению с их паразитами, Probopyrus pandalicola и Eustrongylides sp. Мар Опрос Бык. 2002; 44: 1046–50.

CAS Статья Google ученый

206.

Эванс Д.В., Ирвин С.В.Б., Фицпатрик С. Влияние инфекций дигенеаном (Platyhelminthes) на концентрацию тяжелых металлов в Littorina littorea .J Mar Biol Assoc UK. 2001; 81: 349–50.

Артикул Google ученый

207.

Sures B, Ruchter N, Zimmermann S, Zereini F, Wiseman CLS. Биологические эффекты ЭПГ на водные организмы. В: Zerein F, Wiseman CLS, редакторы. Платиновые металлы в окружающей среде. Гейдельберг: Springer Berlin Heidelberg; 2015. стр. 383–99.

Google ученый

Ленточные черви: причины, симптомы и лечение

Ленточные черви — это кишечные паразиты, имеющие форму рулетки.Паразит — это животное или растение, живущее внутри другого животного или растения.

Ленточный червь не может жить самостоятельно. Он выживает в кишечнике животных, в том числе человека.

Яйца ленточных червей обычно попадают в организм человека-хозяина от животных через пищу, особенно сырое или недоваренное мясо.

Люди также могут заразиться при контакте с фекалиями животных или загрязненной водой. Когда инфекция передается от животного к человеку, это называется зоонозом.

Каждому, у кого есть ленточный червь, потребуется лечение, чтобы избавиться от него.Эффективность лечения составляет 95 процентов, и его можно завершить за несколько дней.

Краткие сведения о ленточных червях

Вот некоторые ключевые моменты о ленточных червях. Более подробная и вспомогательная информация находится в основной статье.

• Ленточные черви — это паразиты, которые выживают внутри другого организма, известного как хозяин.
• Они растут после того, как хозяин проглотит яйца ленточного червя.
• Основными причинами являются употребление загрязненной воды и употребление зараженной пищи.
• Пероральные препараты — обычное лечение.

Большинство людей, заболевших ленточным червем, не испытывают никаких симптомов и не подозревают о том, что у них они есть.

Признаки и симптомы обычно включают усталость, боль в животе, потерю веса и диарею.

Симптомы могут различаться в зависимости от типа ленточного червя, и они могут включать следующее:

• яиц, личинок или сегментов ленточного червя в стуле
• боль в животе
• рвота
• тошнота
• общая слабость
• воспаление кишечника
• диарея
• потеря веса
• изменение аппетита
• нарушения сна это может быть результатом других симптомов.
• головокружение
• судороги в тяжелых случаях.
• недоедание
• дефицит витамина B12 в очень редких случаях

Осложнения

Риск осложнений зависит от нескольких факторов, в том числе от типа ленточного червя и от того, получает ли пациент лечение:

• Цистицеркоз: Если: человек глотает яйца свиного цепня, существует риск заражения личинками. Личинки могут выходить из кишечника и инфицировать ткани и органы в других частях тела, вызывая поражения или кисты.
• Нейроцистицеркоз: Опасное осложнение инфекции свиного цепня. Поражаются мозг и нервная система. У пациента могут быть головные боли, проблемы со зрением, судороги, менингит и спутанность сознания. В очень тяжелых случаях инфекция может быть смертельной.
• Эхинококкоз, или эхинококкоз: Эхинококковый ленточный червь может вызывать инфекцию, называемую эхинококкозом. Личинки покидают кишечник и заражают органы, чаще всего печень. Инфекция может привести к образованию больших кист, которые оказывают давление на близлежащие кровеносные сосуды и нарушают кровообращение.В тяжелых случаях требуется операция или трансплантация печени.

Вылечить инфекцию личинок ленточного червя сложнее, чем лечить инфекцию взрослого ленточного червя.

Пока взрослый ленточный червь остается в кишечнике, личинки могут поселиться в других частях тела. Когда инфекция личинок, наконец, вызывает симптомы, возможно, инфекция сохранялась годами. В некоторых редких случаях заражение личинками может быть опасным для жизни.

Пероральные препараты

Могут быть прописаны пероральные препараты.Пищеварительная система плохо усваивает эти препараты. Они либо растворяются, либо атакуют и убивают взрослого цепня.

Врач может посоветовать пациенту принять слабительное, чтобы помочь ленточному червю выйти из стула. Если у пациента инфекция свиного цепня, ему могут назначить противорвотное средство, предотвращающее рвоту. Рвота во время заражения ленточным червем может привести к повторному заражению при проглатывании личинок ленточного червя,

Стул пациента будет проверяться несколько раз через 1–3 месяца после курса лечения.Эти лекарства при правильном соблюдении процедур эффективны на 95 процентов.

Противовоспалительный препарат

Если инфекция поражает ткани вне кишечника, пациенту, возможно, придется пройти курс противовоспалительных стероидов, чтобы уменьшить отек, вызванный развитием кист.

Хирургия кисты

Если у пациента есть опасные для жизни кисты, которые образовались в жизненно важных органах, таких как легкие или печень, может потребоваться операция. Врач может ввести в кисту лекарство, например формалин, для уничтожения личинок перед удалением кисты.

Большинство людей заражаются после проглатывания яиц или личинок ленточных червей. Общие методы заражения включают:

Проглатывание яиц

Яйца попадают в организм человека через:

• пищу
• вода
• загрязненная почва

Если у хозяина, такого как свинья, внутри есть ленточный червь, сегменты червя или его яйца могут присутствовать в кале хозяина. Они падают на землю. Каждый сегмент может содержать тысячи яиц.

Человек может заразиться:

• питьем загрязненной воды
• взаимодействовать с животными и зараженной почвой
• потреблять зараженную пищу

Яйца вылупляются в личинки и попадают в кишечник или наружу, а также заражают другие части тела.Этот тип инфекции чаще всего встречается у ленточных червей, которые происходят от инфицированных свиней, и гораздо реже, если первоначальным хозяином был крупный рогатый скот или рыба.

Употребление в пищу инфицированного мяса или рыбы

Если мясо или рыба имеют цисты личинок и недоваренные или сырые, цисты могут достигать кишечника, где они созревают и превращаются в взрослых ленточных червей.

Взрослый солитер может:

• жить до 20 лет
• быть длиной до 50 футов
• прикрепляться к стенкам кишечника
• проходить через пищеварительную систему человека и попадать в туалет во время стула

Инфекция рыбного цепня более распространена в странах, где потребление сырой рыбы является обычной практикой, таких как Восточная Европа, Скандинавия и Япония.Недоваренная или сырая пресноводная рыба, такая как лосось, являются наиболее распространенными источниками.

Передача от человека к человеку

Карликовый цепень может передаваться от человека к человеку. Это единственный ленточный червь, который может пройти весь свой жизненный цикл в одном хозяине. Инфекция карликового цепня — самая распространенная инфекция ленточного червя во всем мире.

Передача от насекомых человеку

Блохи и некоторые виды жуков могут собирать яйца, поедая помет инфицированных крыс или мышей.Эти насекомые могут заразить человека. Насекомые считаются промежуточными хозяевами, и ленточный червь переходит из стадии яйца во взрослую стадию. Этот тип инфекции возникает от карликовых ленточных червей и гораздо чаще встречается в районах с плохой гигиеной.

Повторное заражение

Во время лечения люди могут повторно заразиться, если они не соблюдают правила гигиены. Яйца будут присутствовать в стуле человека. Если человек не моет руки после посещения туалета, существует риск повторного заражения.

Игнорирование факторов риска заражения ленточным червем

К факторам риска относятся:

• Работа с животными или контакт с ними: Это особенно актуально в районах, где не удается эффективно избавляться от фекалий.
• Общее отсутствие гигиены: если вы нечасто моете руки, риск передачи инфекции в рот возрастает.
• Путешествие или проживание в определенных частях мира: В некоторых странах и частях некоторых стран с плохой санитарией риск заражения ленточным червем намного выше.
• Потребление сырого или недоваренного мяса и рыбы: личинки и яйца, присутствующие в мясе и рыбе, могут заразить людей, если их есть сырыми или недоваренными. Специалисты говорят, что суши безопасны, если их предварительно заморозить. Риск заражения от рыбы в основном связан с пресноводной рыбой.

У людей инфекция ленточных червей чаще всего вызывается следующими видами:

• свиной цепень ( Taenia solium )
• говяжий цепень ( Taenia saginata )
• карликовый цепень3) nana 45 Hymen
• рыбный цепень из сырой пресноводной рыбы ( Diphyllobothrium latum )
• собачий цепень, чаще встречается в сельской местности

Тип ленточного червя влияет на пораженную область тела и степень тяжести симптомов.

Любой человек, который подозревает инфекцию ленточного червя или имеет симптомы, описанные выше, должен обратиться к своему врачу. Некоторые пациенты могут сами заметить инфекцию, проверяя свой стул на наличие частей взрослого ленточного червя. Тем не менее, врач все равно должен проверить стул, отправив образцы в лабораторию. Врач также может осмотреть область вокруг ануса пациента на предмет наличия яиц или личинок.

В зависимости от типа заражения личинками ленточных червей могут использоваться следующие средства диагностики:

• Анализы крови: Они направлены на поиск антител, вызванных инфекцией.
• Сканирование изображений: Это может включать рентген грудной клетки, ультразвуковое сканирование, компьютерную томографию или МРТ.
• Органы: Врач может захотеть проверить правильность работы органов.

Вывести взрослых ленточных червей из организма проще, чем бороться с личинками.

Обычно достаточно принять лекарство, убивающее ленточного червя, чтобы организм избавился от ленточного червя с калом. Медицина сейчас настолько развита, что в хирургии часто нет необходимости.

Однако препараты очень токсичны. Если ленточный червь достигает мозга, для удаления паразита можно использовать хирургическое вмешательство и лекарство.

Существует несколько эффективных методов предотвращения заражения ленточным червем, в том числе:

• Соблюдение правил гигиены: Тщательно вымойте руки с мылом после посещения туалета и перед едой.
• Меры предосторожности при питании: В местах, где распространены ленточные черви, обязательно мойте и готовьте все фрукты и овощи чистой водой.
• Домашний скот: Утилизируйте фекалии животных и человека надлежащим образом. Сведите к минимуму контакт животных с яйцами ленточных червей.
• Мясо: Тщательно готовьте мясо до температуры не менее 150 ° по Фаренгейту (66 ° Цельсия). Это убьет личинки или яйца.
• Мясо и рыба: Заморозьте рыбу и мясо не менее 7 дней. Это убьет яйца и личинки ленточных червей.
• Сырые продукты: Не употребляйте сырую или недоваренную свинину, говядину и рыбу.
• Собаки: Если у вас есть собака, убедитесь, что она лечится от ленточных червей.Будьте особенно осторожны с личной гигиеной. Убедитесь, что ваша собака ест только приготовленное мясо и рыбу.
• Гигиена кухни: Следите за тем, чтобы все рабочие поверхности регулярно чистились и дезинфицировались.

Не позволяйте сырым продуктам соприкасаться с другими продуктами. Мойте руки после прикосновения к сырому мясу или рыбе. Эксперты говорят, что копчение или сушка мяса или рыбы — ненадежный способ убить личинки или яйца.

Симптомы, причины, лечение и профилактика

Паразит — это организм, который живет внутри или на другом организме, который называется хозяином.Благодаря этому взаимодействию паразит получает преимущества, такие как питательные вещества, за счет хозяина.

Есть три типа паразитов:

• простейшие. Это одноклеточные организмы, способные расти и размножаться в организме хозяина. Примеры включают видов Plasmodium и видов Giardia , которые могут вызывать малярию и лямблиоз, соответственно.
• Гельминты. Гельминты — более крупные червеобразные паразиты.Примеры включают круглые черви и плоские черви.
• Эктопаразиты. Эктопаразиты включают в себя такие организмы, как вши, клещи и клещи, которые могут прикрепляться к телу хозяина и жить на нем.

Некоторые паразиты могут инфицировать людей, вызывая паразитарную инфекцию. Обычно они попадают в организм через кожу или через рот. Попав внутрь организма, эти паразиты могут перемещаться в другие органы, включая глаза.

Прочтите, чтобы узнать больше о глазных паразитах, в том числе о том, как определить, есть ли он у вас и что делать дальше, если он у вас есть.

Паразитарные глазные инфекции не всегда вызывают симптомы, из-за которых их трудно распознать.

Когда симптомы действительно возникают, они могут включать:

• боль в глазах
• покраснение или воспаление в глазу
• чрезмерное слезоотделение
• нечеткое зрение
• присутствие мутных пятен (маленьких пятен или линий) в поле вашего зрения
• чувствительность к свету
• корка вокруг век и ресниц
• покраснение и зуд вокруг глаз
• рубцевание сетчатки
• потеря зрения и слепота

Акантамебиаз

Акантамебиаз вызван протозоидным паразитом.Акантамеба — очень распространенный организм в пресноводных и морских средах по всему миру. Хотя обычно он не вызывает инфекцию, когда это происходит, он может потенциально повредить ваше зрение.

Acanthamoeba передается при прямом контакте с паразитом и роговицей вашего глаза. Плохой уход за контактными линзами является основным фактором риска развития акантамебиаза.

Токсоплазмоз

Токсоплазмоз также вызывается простейшими паразитами. Он широко распространен в окружающей среде и может быть обнаружен в отходах животных, особенно домашних кошек.

Паразит может проникнуть в ваш организм, когда вы его проглотите. Он также может передаваться от матери к ребенку во время беременности.

У большинства людей, заболевших токсоплазмозом, не развиваются какие-либо заболевания глаз. Но когда это происходит, это называется глазным токсоплазмозом. Люди с ослабленной иммунной системой и новорожденные, заразившиеся от матери, с большей вероятностью разовьются глазным токсоплазмозом.

Если не лечить глазной токсоплазмоз, он может вызвать рубцы на глазу и привести к потере зрения.

Loiasis

Loiasis вызывается паразитом гельминтов, обнаруженным в Африке.

Вы можете заразиться инфекцией через укус зараженной мухи. Попав внутрь организма, паразит продолжает развиваться и может мигрировать в различные ткани. Он также производит личинок, называемых микрофиляриями.

Взрослый червь и его личинки могут вызывать боль в глазах, нарушение движения глаз и проблемы со зрением, включая чувствительность к свету.

Гнатостомоз

Гнатостомоз вызывается паразитом-гельминтом, который в основном встречается в Азии, особенно в некоторых частях Юго-Восточной Азии, Таиланде и Японии.Его также можно найти в некоторых частях Африки, Южной Америки и Центральной Америки.

Вы можете заразиться паразитом, употребляя сырое или недоваренное мясо или рыбу. Паразит покидает ваш желудочно-кишечный тракт. Оттуда он может перейти к другим частям вашего тела, включая глаза. Если это произойдет, это может привести к частичной или полной слепоте.

Речная слепота (онхоцеркоз)

Речная слепота, также называемая онхоцеркозом, вызывается паразитами-гельминтами. Паразит встречается в некоторых частях Африки, Ближнего Востока, Южной Америки и Центральной Америки.

Вы можете получить речную слепоту, если вас укусит зараженная мошка.

Личинки паразита проникают сквозь вашу кожу, где они могут развиться во взрослых червей. Затем эти черви производят больше личинок, которые могут перемещаться в разные ткани. Если они достигнут вашего глаза, они могут вызвать слепоту.

Токсокароз

Паразит-гельминт вызывает токсокароз. Он встречается во всем мире и чаще всего встречается у домашних собак и кошек.

Вы можете заразиться паразитом, проглотив его яйца, которые часто находятся в почве, загрязненной фекалиями животных.Яйца вылупляются в кишечнике, а личинки могут мигрировать в другие части вашего тела.

Токсокароз редко поражает глаза, но в некоторых случаях может вызвать потерю зрения.

Крабовые вши

Крабовые вши, также называемые лобковыми вшами, встречаются во всем мире. Это маленькие насекомые, которые обычно колонизируют волосы в области гениталий. Но они также могут быть найдены на других участках волос, включая ресницы.

Обычно они передаются половым путем, но зараженные личные вещи, такие как одежда или полотенца, также могут передавать их.

Demodex folliculorum

D. folliculorum — это клещи, которые обнаруживаются в волосяных фолликулах людей по всему миру. Это относится и к волосяным фолликулам ваших ресниц.

Иногда эти клещи могут вызывать состояние, называемое демодекозом. Демодекоз может вызвать раздражение вокруг ресниц и привести к потере ресниц, конъюнктивиту и ухудшению зрения.

Хотя полностью избежать паразитов сложно, есть несколько вещей, которые вы можете сделать, чтобы снизить риск развития паразитарной инфекции в глазу.

Соблюдайте правила гигиены

Часто мойте руки, особенно перед едой, после посещения туалета и после сбора отходов животного происхождения. Избегайте совместного использования личных вещей, таких как одежда, полотенца и простыни.

Готовьте пищу правильно

Если вы путешествуете по местности, где распространены паразитарные инфекции, избегайте употребления сырых или недостаточно приготовленных продуктов. Убедитесь, что все продукты приготовлены до нужной внутренней температуры. Если вы работаете с сырой пищей, наденьте перчатки и после этого вымойте руки.

Предотвращение укусов насекомых

Если вы собираетесь выходить на улицу в течение дня, когда насекомые могут вас укусить, нанесите инсектицид на открытые участки кожи или наденьте защитную одежду.

Правильный уход за контактными линзами

Если вы носите контактные линзы, не чистите их и не храните их в водопроводной воде. Используйте только стерильные средства, одобренные для чистки контактов. При хранении контактов меняйте контактный раствор в футляре каждый раз.

Обязательно вымойте руки перед тем, как работать с контактными линзами или надевать их.Вам также следует избегать ношения контактных линз во время сна, особенно после плавания.

Список лекарств от говяжьего солитера (Taenia saginata) (4 сравненных)

Другие названия: Ленточный червь (говядина)

Информация об инфекции мясного солитера (Taenia saginata)

Инфекция солитера вызывается употреблением в пищу сырого или недоваренного мяса инфицированных животных. Крупный рогатый скот обычно является носителем Taenia saginata (T. saginata).

Лекарства, применяемые для лечения инфекции говяжьего солитера (Taenia saginata)

Следующий список лекарств так или иначе связаны с этим заболеванием или используются для его лечения.

Название препарата	Рейтинг	Отзывы	Мероприятия & квест;	Rx / OTC	Беременность	CSA	Спирт
Просмотр информации о празиквантеле празиквантел	Ставка	Добавить отзыв		Rx	B	N
Общее название: празиквантел системный Брендовое название: Бильтубийство Класс препарата: глистогонные Потребителям: дозировка, взаимодействия, побочные эффекты Для профессионалов: Факты о наркотиках от А до Я, Монография AHFS DI, Информация о назначении
Просмотреть информацию о Biltricide Бильтубийство	Ставка	Добавить отзыв		Rx	B	N
Общее название: празиквантел системный Класс препарата: глистогонные Потребителям: дозировка, взаимодействия, побочные эффекты Для профессионалов: Назначение информации
Посмотреть информацию о Humatin Хуматин	Ставка	Добавить отзыв		Rx	N	N
Общее название: паромомицин системный Класс препарата: амебициды, аминогликозиды Потребителям: дозировка, взаимодействия, побочные эффекты Для профессионалов: Назначение информации
Просмотреть информацию о паромомицине паромомицин	Ставка	Добавить отзыв		Rx	N	N
Общее название: паромомицин системный Брендовое название: Хуматин Класс препарата: амебициды, аминогликозиды Потребителям: дозировка, взаимодействия, побочные эффекты Для профессионалов: Факты о наркотиках от А до Я, Монография AHFS DI, Информация о назначении

Легенда

Рейтинг	Для оценки пользователей спрашивали, насколько эффективным они нашли лекарство с учетом положительных / побочных эффектов и простоты использования (1 = неэффективно, 10 = наиболее эффективно).
Деятельность	Активность основана на недавних действиях посетителей сайта по отношению к другим лекарствам в списке.
Rx	Только по рецепту.
ОТС	Без рецепта.
Rx / OTC	По рецепту или без рецепта.
Не по назначению	Это лекарство не может быть одобрено FDA для лечения этого состояния.

Категория беременности
А	Адекватные и хорошо контролируемые исследования не смогли продемонстрировать риск для плода в первом триместре беременности (и нет доказательств риска в более поздних триместрах).
Б	Исследования репродукции животных не смогли продемонстрировать риск для плода, и нет адекватных и хорошо контролируемых исследований у беременных женщин.
К	Исследования репродукции животных показали неблагоприятное воздействие на плод, и адекватных и хорошо контролируемых исследований на людях не проводилось, но потенциальные преимущества могут потребовать применения у беременных женщин, несмотря на потенциальные риски.
Д	Имеются положительные доказательства риска для плода у человека, основанные на данных о побочных реакциях, полученных в результате исследований или маркетингового опыта или исследований на людях, но потенциальные преимущества могут потребовать применения у беременных женщин, несмотря на потенциальные риски.
х	Исследования на животных или людях продемонстрировали аномалии плода и / или есть положительные доказательства риска для плода у человека, основанные на данных о побочных реакциях из исследовательского или маркетингового опыта, и риски, связанные с использованием у беременных женщин, явно перевешивают потенциальную пользу.
N	FDA не классифицировало препарат.

Закон о контролируемых веществах (CSA) Приложение
N	Не подпадает под действие Закона о контролируемых веществах.
1	Имеет высокий потенциал для злоупотреблений. В настоящее время не применяется в медицинских целях в США. Отсутствуют общепринятые правила безопасности для использования под медицинским наблюдением.
2	Имеет высокий потенциал для злоупотреблений. В настоящее время разрешено медицинское использование для лечения в Соединенных Штатах или в настоящее время принятое медицинское использование с серьезными ограничениями. Жестокое обращение может привести к серьезной психологической или физической зависимости.
3	Имеет меньшую вероятность злоупотребления, чем те, которые указаны в таблицах 1 и 2. В настоящее время разрешено медицинское использование в лечении в Соединенных Штатах. Злоупотребление может привести к умеренной или низкой физической зависимости или высокой психологической зависимости.
4	Имеет низкий потенциал злоупотребления по сравнению с теми, которые указаны в таблице 3. В настоящее время он широко используется в медицинских целях в США. Злоупотребление может привести к ограниченной физической или психологической зависимости по сравнению с теми, которые указаны в Таблице 3.
5	Имеет низкий потенциал злоупотребления по сравнению с теми, которые указаны в таблице 4. В настоящее время разрешено медицинское использование для лечения в Соединенных Штатах. Жестокое обращение может привести к ограниченной физической или психологической зависимости по сравнению с теми, которые указаны в таблице 4.

Спирт
X	Взаимодействует с алкоголем.

Дополнительная информация

Всегда консультируйтесь со своим лечащим врачом, чтобы информация, отображаемая на этой странице, соответствовала вашим личным обстоятельствам.

Заявление об отказе от ответственности

микробных симбиозов | Безграничная микробиология

Мутуализм против симбиоза

Симбиоз — это отношения между двумя организмами: они могут быть мутуалистическими (оба приносят пользу), комменсальными (одна выгода) или паразитическими.

Цели обучения

Сравните мутуализм и симбиоз

Ключевые выводы

Ключевые моменты

• Мутуализм, отношения, в которых выигрывают оба вида, обычен в природе.В микробиологии существует множество примеров мутуалистических бактерий в кишечнике, которые помогают пищеварению как у людей, так и у животных.
• Комменсализм — это отношения между видами, в которых один выигрывает, а другой не затрагивается. В организме человека обитают различные комменсальные бактерии, которые не причиняют им вреда, а полагаются на них для выживания (например, бактерии, поедающие омертвевшую кожу).
• Паразитарные отношения, при которых один вид получает выгоду, а другой страдает, очень распространены в природе.Большинство микроорганизмов, изучаемых в медицинской микробиологии, паразитируют и питаются тканями человека. Например, холера, лешманиоз и лямблии являются паразитическими микробами.
• Симбиотические отношения также можно классифицировать по физическим отношениям между двумя видами. Эндосимбионты живут внутри тканей хозяина, а эктосимбионты живут за пределами своих видов-партнеров.

Ключевые термины

• комменсализм : класс отношений между двумя организмами, при котором один организм получает пользу, не влияя на другой
• симбиоз : Тесное и часто долгосрочное взаимодействие между двумя или более разными биологическими видами
• мутуализм : Отношения между особями разных видов, в которых выигрывают обе особи

Симбиоз — это любые отношения между двумя или более биологическими видами.Такие отношения обычно являются долгосрочными и сильно влияют на приспособленность одного или обоих организмов. Симбиотические отношения классифицируются по преимуществам и физическим отношениям, испытываемым каждым видом.

Общие типы симбиоза классифицируются по степени, в которой каждый вид выигрывает от взаимодействия:

• Мутуализм: В мутуалистических взаимодействиях оба вида выигрывают от взаимодействия. Классический пример мутуализма — взаимоотношения между насекомыми, опыляющими растения, и растениями, которые обеспечивают этих насекомых нектаром или пыльцой.Другой классический пример — поведение мутуалистических бактерий в экологии и здоровье человека. В частности, кишечные бактерии очень важны для пищеварения людей и других видов. У людей кишечные бактерии помогают расщеплять дополнительные углеводы, побеждая вредные бактерии и производя гормоны для прямого накопления жира. Люди, лишенные здоровой мутуалистической кишечной флоры, могут страдать от множества заболеваний, таких как синдром раздраженного кишечника. Некоторые жвачные животные, такие как коровы или олени, полагаются на особые мутуалистические бактерии, которые помогают им расщеплять прочную целлюлозу в растениях, которые они едят.Взамен бактерии получают постоянный запас пищи.
• Комменсализм: В комменсализме один организм получает выгоду, в то время как другой организм не получает выгоды и не страдает от взаимодействия. Например, паук может завязать паутину на растении и получить существенную пользу, в то время как растение не пострадает. Точно так же рыба-клоун может жить внутри морского анемона и получать защиту от хищников, в то время как анемон не приносит пользы и не страдает.
• Паразитизм: Паразиты — это организмы, которые наносят вред своим симбиотическим партнерам.Паразитизм невероятно распространен в природе: в зависимости от определения более половины всех видов могут пройти хотя бы одну паразитическую стадию в своем жизненном цикле. В этом тексте есть много хорошо задокументированных примеров паразитарных бактерий и микроорганизмов.

Симбиоз также можно охарактеризовать физическими отношениями организма со своим партнером.

• Эндосимбиоз: взаимоотношения, при которых один из симбиотических видов живет внутри ткани другого.Например, у коралловых полипов есть особые водоросли, называемые зооксантеллами, которые живут внутри их клеток. Zooxanthelle обеспечивает кораллы сахаром посредством фотосинтеза. Точно так же азотфиксирующие грибы часто живут внутри клеток растений, обеспечивая азот в обмен на сахара фотосинтеза.
• Эктосимбиоз: взаимоотношения, при которых один вид живет на внешней поверхности другого. Моллюски, обитающие на китах, и бромелии, живущие на тропических деревьях, являются примерами эндосимбионтов.

Эти категории могут быть объединены с указанными выше терминами, чтобы лучше описать взаимодействия видов. Например, вы можете сказать, что кишечная бактерия является «эндосимбиотическим мутуалистом» или что блоха является «эктосимбиотическим паразитом». ”

Рубец и жвачные животные

Жвачные животные (например, олени и коровы) переваривают пищу в четырехкамерном желудке с помощью особых бактерий, простейших и грибов.

Цели обучения

Определить, каким образом жвачные животные являются переносчиками симбиотических бактерий

Ключевые выводы

Ключевые моменты

• Жвачные животные используют специальный четырехкамерный желудок с уникальной микробной флорой для переваривания прочной целлюлозы, содержащейся в растениях в их рационе.Большинство позвоночных не могут вырабатывать целлюлазу, фермент, расщепляющий целлюлозу, но микробы в рубце производят ее для них.
• Жвачные животные жуют и глотают растительные вещества, а затем глотают их. В рубце растительные вещества разделяются на жидкости и твердые вещества, а жидкости стекают в сетку. Затем твердые частицы из рубца срыгивают в рот для пережевывания и дальнейшего расщепления.
• Жидкости переходят из ретикулума в омазум, где сахара, жирные кислоты и другие питательные вещества всасываются в кровоток.
• После омасума пища попадает в сычуг, который очень похож на желудок нежвачных (однокамерных) животных, а оттуда попадает в тонкий кишечник, где переваривается.

Ключевые термины

• Рубец : Первая камера пищеварительного тракта жвачных животных. Он служит основным местом микробной ферментации съеденного корма.
• Abomasum : Четвертый и последний отдел желудка жвачных животных.Он выделяет реннин — искусственная форма которого называется сычужным ферментом и используется в производстве сыра.
• Omasum : Третий отдел желудка у жвачных животных. Хотя его функции не были хорошо изучены, по-видимому, он в первую очередь способствует усвоению воды, магния и производимых летучих жирных кислот.

Многокамерный желудок жвачных

Жвачные животные — это млекопитающие, которые переваривают пищу растительного происхождения, перерабатывая ее в ряде камер своего желудка.Насчитывается около 150 видов жвачных животных, включая домашних и диких. К жвачным млекопитающим относятся крупный рогатый скот, козы, овцы, жирафы, бизоны, лоси, лоси, яки, водяные буйволы, олени, верблюды, альпаки, ламы и антилопы.

Жвачные животные отличаются от нежвачных (называемых однокамерными), поскольку у них четырехкамерный желудок. Эти четыре отдела называются рубцом, сеткой, сычугом и сычугом. Рубец и ретикулум связаны и работают согласованно, поэтому их иногда называют «ретикулум».

Пищеварительный тракт жвачного животного : Пищеварительный тракт жвачного животного состоит из четырех отделов: рубца, ретикулума, омасума и сычуга.

Процесс пищеварения жвачных животных

• Жвачные животные жуют растительные вещества, смешивая их со слюной, и глотают. Затем пища поступает в первые две камеры желудка, сетку и рубец (или сетку).
• Сетчатка и рубец работают вместе, разделяя твердые вещества и жидкости. Сокращения выталкивают твердые частицы пищи обратно в рубец, а жидкости стекают в ретикулум.Специализированные виды микробов живут в рубце и помогают жвачным животным расщеплять целлюлозу.
• Твердая жвачка формируется в рубце в виде комочки, называемой «жвачкой», и твердая жвачка отрыгивается обратно в рот, где ее пережевывают во второй раз, и возвращают в ретикулорумен, чтобы повторить процесс.
• Жидкий дигестат из ретикулума попадает в омазум, где питательные вещества и вода всасываются в кровоток.
• После этого пищеварительный тракт попадает в сычуг, который похож на желудок других животных.После сычуга пищеварительный тракт проходит через толстый и тонкий кишечник.

Жвачные животные представляют интерес для микробиологов, поскольку в их рубцах обитают уникальные виды бактерий, дрожжей, простейших и грибов. Растительные вещества, потребляемые жвачими животными, содержат много целлюлозы, но позвоночные не могут производить целлюлазу, которая является ферментом, необходимым для расщепления целлюлозы. Таким образом, жвачные животные зависят от симбиотических микробов в кишечнике, которые расщепляют целлюлозу для пищеварения. В рубце нет кислорода, поэтому бактерии в рубце обычно являются анаэробами или факультативными анаэробами.

Гидротермальные экосистемы микроорганизмов

Гидротермальные источники являются домом для хемосинтезирующих бактерий, которые составляют основу уникальной экосистемы, процветающей в полной темноте.

Цели обучения

Описание микробных экосистем гидротермальных источников

Ключевые выводы

Ключевые моменты

• Гидротермальные источники выбрасывают богатую питательными веществами, геотермально нагретую воду. Маты хемосинтетических бактерий растут вокруг вентиляционных отверстий и синтезируют углеводы из углекислого газа, выбрасываемого вентиляционными отверстиями.
• Многие виды крабов, червей, улиток и трубчатых червей зависят от этих бактериальных матов в качестве пищи. Эти виды часто специально приспособлены к жизни в темноте, под высоким давлением и в жарких условиях вентиляции.
• Вентиляционные отверстия являются объектом эксплуатации горнодобывающей промышленности, что вызывает беспокойство у морских биологов. Майнинг может нанести ущерб этим очень уникальным и разнообразным экосистемам.

Ключевые термины

• хемосинтез : производство углеводов и других соединений из простых соединений, таких как углекислый газ, с использованием окисления химических питательных веществ в качестве источника энергии, а не солнечного света; он ограничен определенными бактериями и грибками.
• геотермальная энергия : Относится к тепловой энергии, извлекаемой из резервуаров в недрах земли.

Гидротермальные источники и их микробные сообщества

Гидротермальный источник — это трещина на поверхности земли, из которой выходит вода, нагретая геотермально. Обычно они находятся глубоко под поверхностью океана. Гидротермальные источники представляют интерес для микробиологов, потому что в них есть уникальные микробные сообщества, которых больше нигде на Земле нет.

Гидротермальные жерла : Гидротермальные жерла — это трещины в земной коре, через которые вытекает вода, нагретая геотермально.

В большинстве мелководных и наземных экосистем энергия исходит от солнечного света, но в глубинах океана царит полная темнота. Однако гидротермальные источники часто вытесняют богатую питательными веществами воду, содержащую метан и соединения серы. Вентиляционные бактерии могут синтезировать все соединения, которые им необходимы для жизни, из этих питательных веществ, этот процесс называется хемосинтезом. Эти бактерии составляют основу всей экосистемы гидротермальных источников.

Хемосинтезирующие бактерии превращаются в толстый слой, покрывающий гидротермальный источник, и это первый трофический уровень экосистемы.Улитки, креветочные крабы, трубчатые черви и рыба питаются бактериальным матом и привлекают более крупные организмы, такие как кальмары и осьминоги. Многие из этих видов специально приспособлены к жизни в темноте и лишены глаз. Гидротермальные источники являются горячими точками биоразнообразия, потому что в них обитает множество видов, которые уникально приспособлены к жизни в этой суровой окружающей среде. Например, трубчатый червь Pompeii Alvinella pompejana может выдерживать температуру до 176 ° F. Эти экосистемы почти полностью независимы от солнечного света (хотя растворенный кислород, используемый некоторыми животными, в конечном итоге поступает из растений на поверхности).

Трубчатые черви, живущие рядом с гидротермальными источниками : Некоторые виды трубчатых червей специально приспособлены к тому, чтобы выдерживать высокие температуры, характерные для гидротермальных источников.

Крабы возле гидротермального источника : Экосистемы вокруг гидротермальных источников зависят от хемосинтетических бактерий матов, и многие виды питаются бактериями. Гидротермальные источники — одни из самых уникальных экосистем в мире

Несмотря на то, что гидротермальные источники являются одними из самых удаленных экосистем в мире, горнодобывающие компании угрожают им.Поскольку минеральные ресурсы на суше истощились, горнодобывающие компании обратились к глубоководным геотермальным источникам для добычи металлов и серы. Хотя технология глубоководной добычи является новой, биологи-экологи обеспокоены тем, что добыча гидротермальных источников разрушит эти хрупкие и уникальные экосистемы.

Симбиоз кальмаров и аливибрионов

Кальмары размещают светообразующие бактерии Allivibiro в специальном органе, чтобы они могли освещать себя и сливаться с окружающей средой.

Цели обучения

Объясните симбиотические отношения кальмаров и алиивибрионов

Ключевые выводы

Ключевые моменты

• Кальмары используют бактерии Allivibrio для генерации света, который позволяет им сливаться со светом, исходящим сверху. Животные под ними не могут видеть свою тень, когда смотрят на кальмара снизу.
• Кальмары используют слизь для привлечения многих видов бактерий в свой световой орган, но они распределяют Аливибиро несколькими способами.Ресничные клетки в световом органе создают ток, который вытесняет большинство бактерий, а кальмар использует перекись водорода для создания враждебной среды, которой может противостоять Aliivibrio.
• Попадая внутрь светового органа, бактерии Aliivibrio получают от кальмаров сахара и аминокислоты. Однако это дорого обходится кальмарам, и кальмар очищает свой световой орган в течение дня, так что ему не нужно постоянно поддерживать колонию бактерий Aliivibrio.

Ключевые термины

• реснички : Органеллы, обнаруженные в эукариотических клетках.Реснички — это тонкие выступы, которые выступают из гораздо более крупного тела клетки.
• Биолюминесценция : Излучение света живым организмом.

Биолюминесценция

Особая категория симбиотических отношений включает биолюминесценцию, при которой световые бактерии размещаются в другом организме. Одним из наиболее изученных примеров биолюминесценции является кальмар гавайский бобтейл ( Euprymna scolopes ) и его мутуалистические бактерии, Aliivibrio fischeri .Aliivibrio fischeri обитает в особом световом органе в мантии кальмара. Кальмары скармливают бактериям раствор сахара и аминокислот. В свою очередь, они излучают свет, чтобы скрыть силуэт кальмара, если смотреть снизу, позволяя кальмару соответствовать условиям окружающего освещения.

Кальмар бобтейл : Кальмар бобтейл полагается на свою мутуалистическую бактерию Allivibrio fischerii для генерации света. Бактерии обитают в специальном световом органе в мантии кальмаров и получают сахар и аминокислоты в обмен на свет.

Птенцы кальмаров бобтейлов не имеют естественного происхождения Aliivibrio fischeri . Они рождаются с особой легкой структурой органов, с ресничными клетками в отверстии, предназначенными для улавливания проходящих A. fischeri , но бактерии должны получать из морской воды. Для этого кальмар выделяет особую слизь всякий раз, когда его клетки обнаруживают пептидогликан (который находится в клеточных стенках бактерий). Слизь собирается возле отверстия светового органа, задерживая проходящие бактерии.Кальмар удаляет нежелательные бактерии несколькими способами. Например, A. fischeri способен выжить в слизи лучше, чем другие виды. Это также очень подвижные бактерии, способные плавать против течения, создаваемого ресничками во рту светового органа.

Кальмар также создает враждебную среду у входа в световой орган, выделяя фермент, который расщепляет перекись водорода, создавая токсичную среду для большинства бактерий. Aliivibrio fischeri может улавливать перекись водорода до того, как кальмар сможет использовать ее в качестве токсина, и, таким образом, сможет выжить во враждебной химической среде.Как только A. fischeri преодолеет эти препятствия при открытии светового органа, он может колонизировать камеры светового органа и начать пользоваться преимуществами симбиоза.

Несмотря на все усилия, затраченные на получение Aliivibrio fischeri, кальмар каждый день выбрасывает 95% своих бактерий. Не совсем понятно, почему кальмары очищают свой световой орган, но бактериям требуется много сахара и аминокислот, поэтому для кальмаров может быть наиболее полезно принимать бактерии только тогда, когда они необходимы.Он также может стать источником бактерий для вылупившихся кальмаров.

Взаимоотношения с грибами и грибными животными

Члены Королевства Грибов устанавливают экологически выгодные взаимные отношения с цианобатериями, растениями и животными.

Цели обучения

Опишите мутуалистические отношения с грибами

Ключевые выводы

Ключевые моменты

• Взаимоотношения — это отношения, в которых выигрывают оба члена ассоциации; Грибы образуют такие отношения с различными другими Царствами жизни.
• Микориза, образованная в результате ассоциации корней растений и примитивных грибов, помогает увеличить усвоение питательных веществ растением; в свою очередь, растение снабжает грибы продуктами фотосинтеза для их метаболического использования.
• В лишайниках грибы живут в непосредственной близости с фотосинтетическими цианобатериями; водоросли снабжают грибы углеродом и энергией, а грибы — минералами и защитой водорослей.
• Взаимоотношения между грибами и животными связаны с многочисленными насекомыми; Членистоногие зависят от грибов для защиты, тогда как грибы получают взамен питательные вещества и обеспечивают способ распространения спор в новую среду.

Ключевые термины

• микориза : симбиотическая ассоциация между грибком и корнями сосудистого растения
• лишайник : любой из многих симбиотических организмов, являющихся ассоциациями грибов и водорослей; часто встречается в виде белых или желтых пятен на старых стенах и т. д.
• слоевище : вегетативное тело гриба

Взаимоотношения

Симбиоз — это экологическое взаимодействие двух организмов, живущих вместе.Однако определение не описывает качество взаимодействия. Когда выигрывают оба члена ассоциации, симбиотические отношения называются мутуалистическими. Грибы образуют мутуалистические ассоциации со многими типами организмов, включая цианобактерии, растения и животных.

Мутуализм грибов и растений

Mycorrhiza, происходящее от греческих слов «мико», что означает гриб, и «ризо», что означает корень, относится к ассоциации между корнями сосудистых растений и их симбиотическими грибами.Около 90 процентов всех видов растений имеют микоризных партнеров. В микоризной ассоциации грибной мицелий использует свою обширную сеть гиф и большую площадь поверхности в контакте с почвой, чтобы направлять воду и минералы из почвы в растения, тем самым увеличивая поглощение растениями питательных веществ. Взамен растение поставляет продукты фотосинтеза, которые подпитывают метаболизм гриба.

Микоризы обладают многими характеристиками примитивных грибов: они производят простые споры, мало разнообразны, не имеют полового репродуктивного цикла и не могут жить вне микоризной ассоциации.Существует несколько видов микоризы. Эктомикориза («внешняя» микориза) зависит от грибов, окружающих корни оболочкой (называемой мантией), и сети гиф Хартига, которая простирается в корни между клетками. Грибковый партнер может принадлежать к Ascomycota, Basidiomycota или Zygomycota. Во втором типе грибы Glomeromycete образуют везикулярно-арбускулярные взаимодействия с арбускулярной микоризой (иногда называемой эндомикоризой). В этих микоризах грибы образуют арбускулы, которые проникают в клетки корня и являются местом метаболического обмена между грибом и растением-хозяином.Арбускулы (от латинского «маленькие деревья») имеют вид кустарника. Орхидеи полагаются на третий тип микоризы. Орхидеи — это эпифиты, которые образуют маленькие семена без особого хранения для поддержания прорастания и роста. Их семена не прорастут без микоризного партнера (обычно базидиомицета). После того, как питательные вещества в семенах истощаются, грибковые симбионты поддерживают рост орхидеи, обеспечивая необходимые углеводы и минералы. Некоторые орхидеи продолжают оставаться микоризными на протяжении всего жизненного цикла.

Микоризные грибы : (а) эктомикориза и (б) арбускулярная микориза имеют разные механизмы взаимодействия с корнями растений.

Лишайники

Лишайники имеют разные цвета и текстуры. Они могут выжить в самых необычных и враждебных местах обитания. Они покрывают камни, надгробия, кору деревьев и землю в тундре, куда не могут проникнуть корни растений. Лишайники могут пережить длительные периоды засухи: они полностью высыхают, а затем быстро становятся активными, когда вода снова становится доступной.Лишайники выполняют множество экологических функций, в том числе выступают в качестве видов-индикаторов, которые позволяют ученым отслеживать состояние среды обитания из-за их чувствительности к загрязнению воздуха.

Лишайники: грибы и цианобатерии : Лишайники имеют множество форм. Они могут быть (а) коркообразными, (б) волосковыми или (в) листовыми.

Лишайники — это не единый организм, а, скорее, пример мутуализма, при котором гриб (обычно член типов Ascomycota или Basidiomycota) живет в тесном контакте с фотосинтезирующим организмом (эукариотическая водоросль или прокариотическая цианобактерия).Как правило, ни грибок, ни фотосинтезирующий организм не могут выжить в одиночку вне симбиотических отношений. Тело лишайника, называемое слоевищем, состоит из гиф, обернутых вокруг фотосинтетического партнера. Фотосинтезирующий организм обеспечивает углерод и энергию в виде углеводов. Некоторые цианобактерии фиксируют азот из атмосферы, внося в ассоциацию азотистые соединения. В свою очередь, грибок поставляет минералы и защищает от сухости и чрезмерного света, заключая водоросли в свой мицелий.Грибок также прикрепляет симбиотический организм к субстрату.

Слоевище лишайника : На этом поперечном срезе слоевища лишайника видна (а) верхняя кора грибковых гиф, обеспечивающая защиту; (б) зона водорослей, где происходит фотосинтез, (в) мозговое вещество гиф грибов и (г) нижняя кора головного мозга, которая также обеспечивает защиту и может иметь (д) ризины для прикрепления слоевища к субстрату.

Слоевище лишайников растет очень медленно, увеличивая свой диаметр на несколько миллиметров в год.И гриб, и водоросль участвуют в формировании единиц распространения для размножения. Лишайники производят соредии, скопления клеток водорослей, окруженные мицелием. Соредии разносятся ветром и водой и образуют новые лишайники.

Мутуализм грибов и животных

Грибы развили взаимные отношения с многочисленными насекомыми. Членистоногие (членистоногие беспозвоночные, такие как насекомые) зависят от грибка для защиты от хищников и патогенов, в то время как гриб получает питательные вещества и способ распространения спор в новую среду.Одним из примеров является ассоциация между видами Basidiomycota и щитовками. Грибной мицелий покрывает и защищает колонии насекомых. Щитовки способствуют поступлению питательных веществ от зараженного растения к грибку. Во втором примере муравьи-листорезы Центральной и Южной Америки буквально выращивают грибы. Они срезают с растений диски из листьев и складывают их в садах. В этих дисковых садах выращивают грибы, которые переваривают целлюлозу в листьях, которую муравьи не могут разрушить.Как только более мелкие молекулы сахара производятся и потребляются грибами, они, в свою очередь, становятся пищей для муравьев. Насекомые также патрулируют свой сад, охотясь на конкурирующие грибы. От ассоциации выигрывают и муравьи, и грибы. Гриб получает постоянный запас листьев и свободу от конкуренции, в то время как муравьи питаются грибами, которые они выращивают.

Агробактерии и болезнь коронной галлы

Argobacterium вызывает болезнь коронной галлы, передавая ДНК-плазмиду растению-хозяину, заставляя хозяина производить для него питательные вещества.

Цели обучения

Обобщить симбиотические отношения между растениями и агробактериями

Ключевые выводы

Ключевые моменты

• Болезнь коронной галлы вызывается Agrobacterium tumefacien s, бактериями, поражающими растения. Бактерия вызывает опухоли на стебле хозяина.
• Agrobacterium tumefaciens манипулирует своими хозяевами, перенося плазмиду ДНК в клетки своего хозяина. Плазмиды обычно используются для передачи ДНК от бактерий к бактериям.
• Попадая в клетку-хозяин, плазмида встраивается в геном клетки-хозяина и заставляет хозяина производить уникальные аминокислоты и другие вещества, которые питают бактерии. Эти соединения непригодны для использования большинством бактерий, поэтому аргобактерии могут превзойти другие виды.

Ключевые термины

• Плазмида : круг из двухцепочечной ДНК, отделенный от хромосом, который встречается у бактерий и простейших.
• пилус : волосовидный отросток, обнаруженный на поверхности клеток многих бактерий.

Болезнь коронной галлы вызывается бактериями под названием Agrobacterium tumefaciens. Заболевание проявляется опухолевидным образованием, обычно на стыке корня и побега. A. tumefaciens может передавать часть своей ДНК растению-хозяину через плазмиду — молекулу бактериальной ДНК, которая не зависит от хромосомы. Новый сегмент ДНК заставляет растение производить необычные аминокислоты и растительные гормоны, которые обеспечивают бактерии углеродом и азотом.

Умные растения сигнализируют фермерам о дефиците питательных веществ : A. tumefaciens прикрепляется к растительной клетке

Бактерии обычно используют плазмиды для горизонтального переноса генов, поэтому они могут делиться генами с родственными бактериями, чтобы помочь им справиться со стрессовой средой. Например, плазмиды могут придавать бактериям способность связывать азот или сопротивляться соединениям антибиотиков. Обычно бактерии переносят плазмиды посредством конъюгации: бактерии-доноры создают трубку, называемую пилусом, которая проникает через клеточную стенку бактерий-реципиентов, и плазмидная ДНК проходит через трубку.Другие бактерии либо интегрируют плазмиду в свои хромосомы, либо она остается свободно плавающей в цитоплазме. В любом случае бактерия-реципиент получает новый генетический материал.

В случае болезни коронной галлы A. tumefaciens переносит плазмиду, содержащую Т-ДНК, в клетки своего растения-хозяина посредством конъюгации, как это было бы с другими бактериями. Однако, оказавшись внутри растительной клетки, ДНК полуслучайно интегрируется в геном растения и изменяет поведение клетки.

Новые плазмидные гены экспрессируются клетками растений и заставляют их секретировать ферменты, производящие аминокислоты октопин или нопалин. Он также несет гены биосинтеза растительных гормонов, ауксина и цитокининов, а также биосинтеза опинов, являющихся источником углерода и азота для бактерий.

Эти опины могут использоваться очень немногими другими бактериями и дают A. tumefaciens конкурентное преимущество.

Симбиоз клубеньков бобовых и корней

Бобовые имеют симбиотические отношения с бактериями, называемыми ризобиями, которые производят аммиак из атмосферного азота и помогают растениям.

Цели обучения

Оценить симбиоз бобовых и азотфиксирующих бактерий

Ключевые выводы

Ключевые моменты

• Ризобии обычно живут в почве, но при ограниченном почвенном азоте бобовые выделяют флавоноиды, которые сигнализируют ризобиям, что растение ищет симбиотические бактерии.
• При воздействии флавоноидов Rhizobia высвобождает фактор клубеньков , который стимулирует растение к образованию деформированных корневых волосков.Затем ризобии образуют «инфекционную нить», которая позволяет им проникать в клетки корня через корневые волоски.
• Как только ризобии попадают в клетки корня, клетки корня быстро делятся, образуя узелок.
• Ризобии производят аммиак из азота в воздухе, который используется растениями для создания аминокислот и нуклеотидов. Растение обеспечивает бактерии сахарами.

Ключевые термины

• Фактор нодуляции : сигнальные молекулы, продуцируемые бактериями, известными как ризобии, во время образования клубеньков на корне бобовых.Симбиоз образуется, когда бобовые растения поглощают бактерии.

Бобовые и их азотфиксирующие бактерии

У многих бобовых есть корневые клубеньки, которые являются домом для симбиотических азотфиксирующих бактерий, называемых ризобиями . Это соотношение особенно часто встречается в условиях ограниченного азота. Ризобии превращают газообразный азот из атмосферы в аммиак, который затем используется для образования аминокислот и нуклеотидов.

Клубеньки корня : Клубеньки корня образуются, когда азотфиксирующие бактерии, называемые ризобиями, проникают в клетки растения-хозяина.

Ризобии обычно живут в почве и могут существовать без растения-хозяина. Однако, когда бобовые растения сталкиваются с условиями с низким содержанием азота и хотят установить симбиотические отношения с ризобиями, они выделяют флавиноиды в почву. Ризобии реагируют высвобождением фактора клубеньков (иногда называемого просто , фактор ), который стимулирует образование клубеньков в корнях растений. Воздействие нод-фактора вызывает образование деформированных корневых волосков, которые позволяют ризобиям проникать в растение.Затем ризобии образуют инфекционную нить, которая представляет собой межклеточную трубку, которая проникает в клетки растения-хозяина, а затем бактерии проникают в клетки растения-хозяина через деформированные корневые волоски. Ризобии также могут проникать в корень, вставая между трещинами между клетками корня; этот способ заражения называется русификатором . Бактерии проникают в клетки корня из межклеточных пространств, также используя инфекционную нить для проникновения через клеточные стенки. Инфекция вызывает быстрое деление клеток в клетках корня, образуя узелок ткани.

Отношения между бобом-хозяином и ризобиями являются симбиотическими, что приносит пользу обоим участникам. После того, как ризобии обосновались в корневом клубеньке, растение вырабатывает углеводы в форме малата и сукцината, а ризобии обеспечивают аммиак для образования аминокислот. Многие бобовые являются популярными сельскохозяйственными культурами именно потому, что для них требуется очень мало удобрений: их ризиобия фиксирует для них азот. При правильном использовании некоторые бобовые могут даже служить удобрением для более поздних культур, связывая азот в растениях, оставаясь в почве.

Соевые бобы : Соевые бобы — это бобовые культуры, в основе которых лежат ризобии

.

No related posts.